| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-8页 |
| 1 文献综述 | 第8-21页 |
| ·木质素的组成及分布 | 第9-11页 |
| ·木质素的组成 | 第9-10页 |
| ·木质素的分布 | 第10-11页 |
| ·木质素的生物合成途径 | 第11-12页 |
| ·玉米中的木质素调控相关研究 | 第12-13页 |
| ·木质素生物合成途径中的关键酶 | 第13-17页 |
| ·苯丙氨酸解氨酶 (PAL) | 第13-14页 |
| ·香豆酸辅酶 A 连接酶 (4CL) | 第14页 |
| ·肉桂酸 4 -经基化酶 (C4H) | 第14页 |
| ·咖啡酸- O-甲基转移酶 (COMT) 和阿魏酸 5 -羟基化酶(F5H) | 第14-15页 |
| ·香豆酸3-羟基化酶 (C3H) | 第15页 |
| ·咖啡酰辅酶 A 甲基转移酶 (CCoAOMT) | 第15-16页 |
| ·芥子醇脱氢酶 (SAD) 与肉桂醇脱氢酶 (CAD) | 第16页 |
| ·肉桂醛辅酶 A 还原酶 (CCR) | 第16-17页 |
| ·木质素生物合成调控研究进展 | 第17-19页 |
| ·木质素总量合成的生物调控 | 第17-18页 |
| ·木质素单体特异性合成关键酶的调控 | 第18-19页 |
| ·木质素合成调控的转基因技术发展 | 第19-21页 |
| 2 引言 | 第21-22页 |
| 3 材料与方法 | 第22-42页 |
| ·材料 | 第22-23页 |
| ·实验材料 | 第22页 |
| ·主要试剂及培养基配制 | 第22-23页 |
| ·引物设计 | 第23页 |
| ·仪器设备 | 第23-24页 |
| ·研究方法 | 第24-42页 |
| ·目的基因片段的获得 | 第24-28页 |
| ·pUCCRNAi＋2F 载体的构建 | 第28-31页 |
| ·p1301＋Bar+2F 载体的构建 | 第31-33页 |
| ·p1301＋Bar+2F 干涉表达载体转化农杆菌 | 第33-34页 |
| ·玉米的茎尖转化 | 第34-36页 |
| ·转基因植株的分子检测 | 第36-37页 |
| ·Klason 木质素、纤维素含量的测定 | 第37-40页 |
| ·组织化学染色 | 第40-41页 |
| ·利用 GC - MS 分析木质素单体的组分变化 | 第41-42页 |
| 4 结果与分析 | 第42-50页 |
| ·目的基因片段的获得 | 第42页 |
| ·载体构建验证 | 第42-45页 |
| ·pUCCRNAi+2F 载体构建验证 | 第42-44页 |
| ·p1301＋Bar+2F 表达载体构建验证 | 第44-45页 |
| ·干涉载体导入农杆菌的验证及转基因植株的获得 | 第45-46页 |
| ·干涉载体的 PCR 验证 | 第45-46页 |
| ·转基因植株的获得 | 第46页 |
| ·转 CCoAOMT 基因植株的检测 | 第46-50页 |
| ·转 CCoAOMT 基因植株的 PCR 检测 | 第46-47页 |
| ·转基因植株的半定量 RT-PCR 检测 | 第47页 |
| ·转基因植株的 Klason 木质素与纤维素的测定 | 第47-48页 |
| ·转基因植株的组织化学染色观察 | 第48-49页 |
| ·GC - MS 分析木质素单体组分的改变 | 第49-50页 |
| 5 讨论 | 第50-52页 |
| ·CCoAOMT 基因的下调对玉米木质素的含量及组分有影响 | 第50-51页 |
| ·抑制 CCoAOMT 表达对植株正常生长的影响 | 第51-52页 |
| 6 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 作者简介 | 第62页 |
