英文缩略词表 | 第1-9页 |
中文摘要 | 第9-16页 |
英文摘要 | 第16-25页 |
研究一 地塞米松协同促进β-淀粉样蛋白对大鼠海马神经元损伤的毒性及其机理 研究 | 第25-69页 |
1 前言 | 第25-26页 |
2 材料和方法 | 第26-44页 |
·材料 | 第26-29页 |
·实验动物 | 第26-27页 |
·药品与试剂 | 第27-28页 |
·仪器与设备 | 第28-29页 |
·实验器材的准备 | 第29页 |
·实验方法 | 第29-44页 |
·整体实验 | 第29-30页 |
·细胞培养及药物作用 | 第30-33页 |
·细胞活力测定 | 第33-34页 |
·细胞凋亡分析 | 第34-36页 |
·胞内Ca~(2+)的测定 | 第36-37页 |
·海马神经元总蛋白、胞浆和胞核蛋白样本的提取及蛋白定量 | 第37-44页 |
·统计学处理 | 第44页 |
3 结果 | 第44-60页 |
·DEX 促进Aβ_(25-35)引起大鼠学习记忆能力下降作用的研究 | 第44-48页 |
·DEX 协同促进Aβ引起海马神经元活力下降的作用 | 第48-50页 |
·DEX、Aβ_(25-35)及DEX+Aβ_(25-35)对海马神经元的TUNEL 染色及凋亡率的影响 | 第50-51页 |
·DEX、Aβ_(25-35)及DEX+Aβ_(25-35)对海马神经元DNA 损伤的影响 | 第51-53页 |
·DEX 协同促进Aβ_(25-35) 诱导海马神经元胞内[Ca~(2+)]i 增加的作用 | 第53-55页 |
·DEX、Aβ_(25-35)及DEX+Aβ_(25-35)对海马神经元NF-κB 和IκBα表达的影响 | 第55-57页 |
·DEX、Aβ_(25-35)及DEX+Aβ_(25-35)对海马神经元p53 蛋白表达量的影响 | 第57-58页 |
·DEX 协同促进Aβ_(25-35)引起海马神经元p-tau-Thr231 蛋白表达量的增加 | 第58-60页 |
4 讨论 | 第60-67页 |
5 小结 | 第67-69页 |
研究二 黄芪总苷对Aβ和DEX 协同诱导大鼠海马神经元损伤保护作用及其机理的研究 | 第69-103页 |
1 前言 | 第69-70页 |
2 材料和方法 | 第70-78页 |
·材料 | 第70-72页 |
·实验动物 | 第70-71页 |
·药品与试剂 | 第71页 |
·仪器与设备 | 第71-72页 |
·实验方法 | 第72-78页 |
·AD 大鼠模型的制备和分组 | 第72页 |
·水迷宫实验 | 第72页 |
·病理形态学检查 | 第72-73页 |
·胎鼠海马神经元培养,MTT 法检测细胞活力,胞内钙离子测定 | 第73页 |
·RT-PCR | 第73-76页 |
·神经元凋亡检测和p-tau-Thr231 分析 | 第76-77页 |
·黄嘌呤(Xanthine, X)-黄嘌呤氧化酶(Xanthine oxidase, XO)系统产生(?)的检测 | 第77页 |
·黄嘌呤氧化酶(XO)活力的检测 | 第77页 |
·非酶体系产生(?)的检测 | 第77页 |
·Fe~(2+)-H_2O_2体系产生OH 的检测 | 第77-78页 |
·统计学处理 | 第78页 |
3 实验结果 | 第78-96页 |
·AST 对AD 模型大鼠学习、记忆能力的影响 | 第78-79页 |
·AST 对AD 模型大鼠海马病理组织学的影响 | 第79-81页 |
·AST对Aβ和DEX+Aβ引起海马神经元活力损伤的影响 | 第81-85页 |
·AST 对Aβ 和DEX+Aβ 引起海马神经元凋亡的影响 | 第85-87页 |
·AST 对海马神经元[Ca~(2+)_i]的影响 | 第87-89页 |
·AST对Aβ和DEX+Aβ引起海马神经元tau异常磷酸化的影响 | 第89-91页 |
·AST 对海马神经元p53mRNA 表达的影响 | 第91-92页 |
·AST 对体外黄嘌呤氧化酶和非酶体系产生超氧阴离子的影响 | 第92-93页 |
·AST 对 Fe~(2+)-H_2O_2体系(Fenton 反应)产生OH 引起苯甲酸羟化的影响 | 第93-96页 |
4 讨论 | 第96-101页 |
5 小结 | 第101-103页 |
参考考献 | 第103-114页 |
附录 | 第114-117页 |
致谢 | 第117-118页 |
综述 | 第118-136页 |
参考文献 | 第129-136页 |