狐尾草遗传转化体系的建立探索
摘要 | 第1-9页 |
ABSTRACT | 第9-11页 |
第一部分 文献综述 | 第11-27页 |
1. 狐尾草作为C_4模式植物的研究进展 | 第11-18页 |
·狐尾草生物学特征 | 第11页 |
·C_4光合作用研究进展 | 第11-18页 |
·光合作用概述 | 第11-12页 |
·C_3和C_4光合代谢途径发现 | 第12-13页 |
·C_3和C_4光合代谢的区别及C_4类型 | 第13-15页 |
·C_4光合效率高的原因 | 第15页 |
·C_4植物的地理分布、系统发生分布与分类 | 第15页 |
·C_3植物C_4改造的尝试 | 第15-17页 |
·C_4模式植物研究 | 第17页 |
·狐尾草作为C_4模式植物的优势 | 第17-18页 |
·狐尾草再生和遗传转化进展 | 第18页 |
2. 植物组织培养概述 | 第18-20页 |
·组织培养中器官发生规律 | 第19-20页 |
·组织培养中激素的作用 | 第20页 |
3. 影响愈伤组织再生的因素 | 第20-23页 |
·幼嫩和成熟材料的不同 | 第20-21页 |
·植物成熟胚组织培养研究进展 | 第21页 |
·基因型对细胞再生能力的影响 | 第21页 |
·各种不同种类植物培养基 | 第21-23页 |
4. 植物遗传转化方法 | 第23-24页 |
5. 根癌农杆菌的研究历史回顾 | 第24-25页 |
6. 狐尾草工作的目的 | 第25-27页 |
第二部分 狐尾草愈伤诱导和再生体系建立 | 第27-45页 |
1. 材料与方法 | 第27-28页 |
·材料的选择 | 第27页 |
·材料的消毒 | 第27-28页 |
·幼穗的消毒 | 第27页 |
·幼胚的消毒 | 第27页 |
·下胚轴消毒 | 第27-28页 |
·成熟种子消毒 | 第28页 |
2. 愈伤培养方法 | 第28-29页 |
·诱导培养 | 第28页 |
·继代培养 | 第28页 |
·分化培养 | 第28页 |
·再生植株移栽 | 第28-29页 |
3. 结果与分析 | 第29-41页 |
·胚性愈伤和非胚性愈伤区分 | 第29-31页 |
·基本培养基对愈伤诱导的影响 | 第31页 |
·外植体选择对愈伤产生的影响 | 第31-36页 |
·幼穗为外植体 | 第31-32页 |
·下胚轴为外植体 | 第32-33页 |
·幼胚为外植体 | 第33-34页 |
·成熟种子为外植体 | 第34-36页 |
·接种方式对愈伤诱导的影响 | 第36-37页 |
·植物激素对胚性愈伤的影响 | 第37-39页 |
·继代培养对愈伤分化的影晌 | 第39-41页 |
4. 讨论 | 第41-44页 |
·培养基的筛选 | 第41-42页 |
·外植体的筛选 | 第42页 |
·接种方法的影响 | 第42-43页 |
·激素组合的筛选 | 第43-44页 |
·继代次数的影响 | 第44页 |
5. 狐尾草愈伤组织诱导和植株再生总结 | 第44-45页 |
第三部分 农杆菌介导的遗传转化实验 | 第45-53页 |
1. 材料和菌株 | 第45页 |
·植物材料 | 第45页 |
·菌株及质粒载体 | 第45页 |
2. 仪器和设备 | 第45-46页 |
3. 药品及试剂 | 第46-47页 |
·DNA 提取与纯化试剂 | 第46页 |
·农杆菌培养基的配制 | 第46页 |
·农杆菌介导的遗传转化培养基 | 第46-47页 |
4 实验方法 | 第47-49页 |
·农杆菌的活化 | 第47页 |
·农杆菌与植物材料的共培养 | 第47页 |
·愈伤组织的恢复培养 | 第47-48页 |
·抗性愈伤组织的筛选培养 | 第48页 |
·转基因植株的获得 | 第48页 |
·转基因植株分子检测 | 第48-49页 |
·基因组DNA 的提取、纯化 | 第48页 |
·转基因植株的PCR 检测 | 第48-49页 |
·转基因植株的gus 检测 | 第49页 |
5. 实验结果 | 第49-53页 |
·共培养结果 | 第49-50页 |
·抗性愈伤组织的筛选培养 | 第50页 |
·转基因植株的获得 | 第50-51页 |
·PCR 检测 | 第51-52页 |
·转基因植株的GUS 检测 | 第52-53页 |
6. 农杆菌介导的狐尾草遗传转化总结 | 第53页 |
第四部分 结语 | 第53-55页 |
附录 | 第55-57页 |
参考文献 | 第57-61页 |
攻读硕士期间发表的学术论文 | 第61-62页 |
致谢 | 第62页 |