| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第1章 绪论 | 第10-24页 |
| 1．1 文献综述 | 第10-23页 |
| 1．1．1 蛋白质结构与功能 | 第10-11页 |
| 1．1．2 蛋白质的检测方法 | 第11-23页 |
| 1．2 本学位论文的设想 | 第23-24页 |
| 第2章 对-二甲氨基亚苄罗丹宁测定HSA | 第24-36页 |
| 2．1 实验 | 第24-25页 |
| 2．1．1 仪器与试剂 | 第24-25页 |
| 2．1．2 实验步骤 | 第25页 |
| 2．2 结果与讨论 | 第25-32页 |
| 2．2．1 重复文献[109]实验 | 第25-26页 |
| 2．2．2 HSA-p-DBR复合物的吸收曲线 | 第26-27页 |
| 2．2．3 条件优化 | 第27-30页 |
| 2．2．4 共存物质的影响 | 第30-31页 |
| 2．2．5 样品分析 | 第31-32页 |
| 2．3 反应机理研究 | 第32-35页 |
| 2．3．1 HSA与p-DBR的结合反应 | 第32页 |
| 2．3．2 结合模式 | 第32-35页 |
| 2．3．3 离子强度对HSA与p-DBR结合反应的影响 | 第35页 |
| 2．4 小结 | 第35-36页 |
| 第3章 对-氯苯酚偶氮罗丹宁测定HSA | 第36-42页 |
| 3．1 仪器与试剂 | 第36页 |
| 3．2 结果与讨论 | 第36-41页 |
| 3．2．1 HSA-CPARH复合物的吸收曲线 | 第36-37页 |
| 3．2．2 条件优化 | 第37-40页 |
| 3．2．3 共存物质的影响 | 第40页 |
| 3．2．4 样品分析 | 第40-41页 |
| 3．3 小结 | 第41-42页 |
| 第4章 4-(2-噻唑偶氮)-1，3-二羟基萘测定HSA | 第42-51页 |
| 4．1 仪器与试剂 | 第42页 |
| 4．2 结果与讨论 | 第42-47页 |
| 4．2．1 HSA-TADNm复合物的吸收曲线 | 第42-43页 |
| 4．2．2 条件优化 | 第43-46页 |
| 4．2．3 共存物质的影响 | 第46-47页 |
| 4．2．4 样品分析 | 第47页 |
| 4．3 反应机理研究 | 第47-50页 |
| 4．3．1 最大结合数 | 第47-48页 |
| 4．3．2 结合模式 | 第48-49页 |
| 4．3．3 离子强度对反应体系的影响 | 第49-50页 |
| 4．4 小结 | 第50-51页 |
| 第5章 2-[2'-苯并噻唑偶氮]-1，8-二羟基-3，6-萘二磺酸测定HSA | 第51-57页 |
| 5．1 仪器与试剂 | 第51页 |
| 5．2 结果与讨论 | 第51-56页 |
| 5．2．1 HSA-BTAC复合物的吸收曲线 | 第51-52页 |
| 5．2．2 条件优化 | 第52-54页 |
| 5．2．3 共存物质的影响 | 第54-55页 |
| 5．2．4 样品分析 | 第55-56页 |
| 5．3 小结 | 第56-57页 |
| 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
