| 第一章 绪论 | 第1-20页 |
| §1．1 神经系统中的钙离子和一氧化氮 | 第7-13页 |
| 1．1．1 神经系统中的钙离子及其生理意义 | 第7-11页 |
| 1．1．2 神经系统中的一氧化氮及其生理意义 | 第11-12页 |
| 1．1．3 神经系统中钙离子和一氧化氮间的相互关联和调控 | 第12-13页 |
| §1．2 钙离子和一氧化氮的检测方法 | 第13-18页 |
| 1．2．1 钙离子的检测方法 | 第13-16页 |
| 1．2．2 一氧化氮的检测方法 | 第16-17页 |
| 1．2．3 钙离子和一氧化氮的同步检测 | 第17-18页 |
| §1．3 课题的提出 | 第18-20页 |
| 1．3．1 本课题的研究目的和意义 | 第18-19页 |
| 1．3．2 课题的整体设计 | 第19-20页 |
| 第二章 培养的海马神经元胞内钙离子和一氧化氮双标记方法的建立 | 第20-34页 |
| §2．1 激光扫描共聚焦显微镜简介 | 第20-23页 |
| 2．1．1 激光扫描共聚焦显微镜成像原理 | 第20-21页 |
| 2．1．2 LSM 510激光扫描共聚焦显微镜系统 | 第21-23页 |
| §2．2 钙离子和一氧化氮荧光探针的选择 | 第23-26页 |
| §2．3 材料和方法 | 第26-30页 |
| 2．3．1 实验动物和试剂 | 第26-27页 |
| 2．3．2 溶液配置 | 第27页 |
| 2．3．3 海马神经元原代培养 | 第27-28页 |
| 2．3．4 神经元胞内钙离子和一氧化氮染色 | 第28页 |
| 2．3．5 图像采集 | 第28-30页 |
| 2．3．6 数据处理 | 第30页 |
| §2．4 实验结果 | 第30-32页 |
| 2．4．1 Calcium Orange和DAF-FM检测的相互独立性 | 第30-31页 |
| 2．4．2 双标记和单标记检测NMDA刺激下海马神经元细胞内Ca~(2+)和NO变化的比较 | 第31-32页 |
| §2．5 讨论 | 第32-34页 |
| 第三章 培养的海马神经元胞内钙离子和一氧化氮的空间分布研究 | 第34-49页 |
| §3．1 前言 | 第34-35页 |
| §3．2 材料和方法 | 第35-36页 |
| 3．2．1 实验动物和主要试剂 | 第35页 |
| 3．2．2 溶液配置 | 第35页 |
| 3．2．3 海马神经元原代培养 | 第35页 |
| 3．2．4 钙离子和一氧化氮双标记染色 | 第35页 |
| 3．2．5 图像采集 | 第35-36页 |
| §3．3 实验结果 | 第36-46页 |
| 3．3．1 20倍物镜下观察海马神经元胞内Ca~(2+)和NO空间分布 | 第36-38页 |
| 3．3．2 100倍油镜下观察海马神经元胞内Ca~(2+)和NO空间分布 | 第38-42页 |
| 3．3．3 NMDA刺激下海马神经元胞内Ca~(2+)和NO浓度在空间分布上的变化 | 第42-46页 |
| §3．4 讨论 | 第46-49页 |
| 第四章 总结与展望 | 第49-51页 |
| §4．1 研究工作总结 | 第49页 |
| §4．2 展望 | 第49-51页 |
| 相关论文发表情况 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
