| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 英文摘要 | 第8-10页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-21页 |
| 1．1 核型分析 | 第11-14页 |
| 1．1．1 花椰菜的分类地位 | 第11-12页 |
| 1．1．2 核型分析的研究进展 | 第12-14页 |
| 1．1．2．1 染色体标本的制作 | 第12-13页 |
| 1．1．2．2 核型分析的方法 | 第13-14页 |
| 1．1．2．3 核型分析存在的问题 | 第14页 |
| 1．2 植物染色体微分离、微克隆技术研究进展 | 第14-20页 |
| 1．2．1 目标染色体的辨认 | 第15-16页 |
| 1．2．2 染色体显微切割与显微分离 | 第16-17页 |
| 1．2．2．1 激光微束法 | 第16页 |
| 1．2．2．2 流式细胞分类器法 | 第16-17页 |
| 1．2．2．3 玻璃针法 | 第17页 |
| 1．2．3 微克隆 | 第17-19页 |
| 1．2．3．1 酶解直接克隆法 | 第17-18页 |
| 1．2．3．2 PCR介导的克隆方法 | 第18-19页 |
| 1．2．4 植物染色体显微切割技术的应用 | 第19-20页 |
| 1．2．4．1 绘制高密度的遗传图谱 | 第19-20页 |
| 1．2．4．2 目的基因的定位与克隆 | 第20页 |
| 1．3 染色体显微分离在蔬菜中的应用价值 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-24页 |
| 2．1 供试材料 | 第21页 |
| 2．2 染色体标本制作 | 第21-22页 |
| 2．2．1 取材 | 第21页 |
| 2．2．2 预处理 | 第21页 |
| 2．2．3 固定 | 第21页 |
| 2．2．4 解离 | 第21-22页 |
| 2．2．4．1 酸解 | 第21-22页 |
| 2．2．4．2 酶解 | 第22页 |
| 2．2．5 染色和压片 | 第22页 |
| 2．3 染色体的核型分析 | 第22页 |
| 2．4 测定方法 | 第22-23页 |
| 2．4．1 细胞分裂相数目的统计 | 第22-23页 |
| 2．4．2 处理效果 | 第23页 |
| 2．5 染色体的显微分离 | 第23页 |
| 2．5．1 玻璃针的制作 | 第23页 |
| 2．5．2 染色体的显微分离 | 第23页 |
| 2．6 数据处理及分析 | 第23-24页 |
| 3 结果与分析 | 第24-36页 |
| 3．1 实验条件对染色体制片的影响 | 第24-31页 |
| 3．1．1 酸解时间的影响 | 第24-25页 |
| 3．1．2 根尖长度对细胞分裂相的影响 | 第25-26页 |
| 3．1．3 不同预处理对根尖细胞分裂相的影响 | 第26-30页 |
| 3．1．3．1 秋水仙素处理 | 第27页 |
| 3．1．3．2 对二氯苯处理 | 第27-28页 |
| 3．1．3．3 放线菌酮处理 | 第28页 |
| 3．1．3．4 α-溴萘处理 | 第28-29页 |
| 3．1．3．5 8-羟基喹啉处理 | 第29页 |
| 3．1．3．6 4℃低温处理 | 第29-30页 |
| 3．1．4 酶解时间的影响 | 第30-31页 |
| 3．2 花椰菜染色体的核型分析 | 第31-33页 |
| 3．3 花椰菜单条染色体的显微分离 | 第33-36页 |
| 3．3．1 具随体的单条染色体的细胞学鉴定及显微分离 | 第33-35页 |
| 3．3．2 任一条染色体的显微分离 | 第35-36页 |
| 4 讨论 | 第36-40页 |
| 4．1 花椰菜高质量染色体标本制备的关键步骤 | 第36-37页 |
| 4．1．1 根尖取材 | 第36页 |
| 4．1．2 预处理 | 第36-37页 |
| 4．1．3 根尖细胞的同步化诱导 | 第37页 |
| 4．2 核型分析的方法 | 第37-38页 |
| 4．3 关于花椰菜的核型 | 第38页 |
| 4．4 关于花椰菜单染色体的微分离 | 第38-40页 |
| 参考文献 | 第40-45页 |
| 附录 | 第45-47页 |
| 致谢 | 第47页 |