| 中文摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 文献综述 | 第13-27页 |
| 第一章 植物抗病性与有关防御酶活性的研究进展 | 第14-22页 |
| 1 超氧化物歧化酶（superoxide dismutase，SOD） | 第14-16页 |
| ·活性氧及膜质过氧化在植物-病原物互作中的作用 | 第14-16页 |
| ·SOD 在植物抗病中的作用及其活性变化 | 第16页 |
| 2 过氧化物酶（peroxidase，POD） | 第16-17页 |
| 3 过氧化氢酶（catalase，CAT） | 第17-18页 |
| 4 多酚氧化酶（polyphenol oxidase，PPO） | 第18页 |
| 5 苯丙氨酸解氨酶（phenylalanine ammonia lyase，PAL） | 第18-19页 |
| 6 植物受病原菌侵染后酶与抗病性的关系 | 第19-20页 |
| 7 总结与展望 | 第20-22页 |
| 第二章 十字花科蔬菜黑腐病的研究进展 | 第22-27页 |
| 1 危害症状 | 第22-23页 |
| 2 病原菌的生物学特性 | 第23页 |
| ·形态 | 第23页 |
| ·特性 | 第23页 |
| ·适应性 | 第23页 |
| 3 流行学特性 | 第23-24页 |
| ·发病规律 | 第23-24页 |
| ·发病条件 | 第24页 |
| 4 致病机理 | 第24页 |
| 5 病害控制 | 第24-25页 |
| 6 抗病性鉴定方法 | 第25-26页 |
| 7 展望 | 第26-27页 |
| 研究报告 | 第27-72页 |
| 引言 | 第28-31页 |
| 第三章 山东省白菜黑腐病病原鉴定及生物学特性的研究 | 第31-45页 |
| 1 材料和方法 | 第31-41页 |
| ·病原菌的分离与致病性测定 | 第31-32页 |
| ·病原菌的采集和分离 | 第31-32页 |
| ·病原菌的致病性测定 | 第32页 |
| ·病原菌的培养性状和形态观察 | 第32-34页 |
| ·菌体的革兰氏染色 | 第32-33页 |
| ·菌体的鞭毛染色 | 第33-34页 |
| ·病原菌生物学特性的测定 | 第34页 |
| ·基本培养基的制备 | 第34-35页 |
| ·病原菌生理生化反应的测定 | 第35-38页 |
| ·硝酸盐的还原 | 第35-36页 |
| ·硫化氢的产生 | 第36页 |
| ·吲哚的产生 | 第36页 |
| ·甲基红试验 | 第36-37页 |
| ·七叶灵水解 | 第37页 |
| ·明胶试验 | 第37页 |
| ·糖的利用 | 第37-38页 |
| ·16S-ITSrDNA 的PCR 扩增与测序 | 第38-41页 |
| ·菌体培养和菌株DNA 的提取 | 第38-39页 |
| ·PCR 扩增 | 第39页 |
| ·检测 | 第39页 |
| ·克隆及测序 | 第39-41页 |
| 2 结果与分析 | 第41-44页 |
| ·病原菌的分离及其致病性 | 第41页 |
| ·病原菌培养性状和形态观察 | 第41-42页 |
| ·病原菌的生物学特性 | 第42-43页 |
| ·核糖体16S-ITSrDNA 的序列分析 | 第43-44页 |
| ·菌株的16S-ITSrDNA 全序列扩增 | 第43页 |
| ·菌株的16S-ITSrDNA 全序列测定和同源性分析 | 第43-44页 |
| 3 结论与讨论 | 第44-45页 |
| 第四章 大白菜黑腐病苗期抗病性鉴定的研究 | 第45-55页 |
| 1 材料与方法 | 第46-48页 |
| ·供试材料 | 第46页 |
| ·接种方法 | 第46-47页 |
| ·接种物浓度试验 | 第47页 |
| ·接种苗龄试验 | 第47页 |
| ·不同时期调查病情的试验 | 第47-48页 |
| ·品种抗病性鉴定 | 第48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-54页 |
| ·不同接种方法对苗期抗病性的影响 | 第48-49页 |
| ·不同接种物浓度对苗期抗病性的影响 | 第49页 |
| ·不同苗龄对苗期抗病性的影响 | 第49-50页 |
| ·病情调查时间的确定 | 第50-51页 |
| ·白菜品种的抗病性鉴定 | 第51-54页 |
| 3 讨论与结论 | 第54-55页 |
| 第五章 不同白菜品种接种黑腐病菌后五种酶活性的测定 | 第55-71页 |
| 1 材料与方法 | 第56-59页 |
| ·供试菌株 | 第56页 |
| ·实验设计 | 第56-57页 |
| ·白菜品种及育苗 | 第56页 |
| ·菌悬液制备 | 第56-57页 |
| ·接菌与取样 | 第57页 |
| ·酶活性测定 | 第57-59页 |
| ·粗酶液的提取 | 第57页 |
| ·SOD 活性测定 | 第57-58页 |
| ·POD 活性测定 | 第58页 |
| ·PPO 活性测定 | 第58页 |
| ·PAL 活性测定 | 第58页 |
| ·CAT 活性测定 | 第58-59页 |
| 2 结果与分析 | 第59-69页 |
| ·SOD 的活性变化 | 第59-61页 |
| ·对照组品种间SOD 的活性比较 | 第59页 |
| ·处理组品种间SOD 的活性比较 | 第59-61页 |
| ·POD 活性变化 | 第61-63页 |
| ·对照组品种间POD 的活性比较 | 第61页 |
| ·处理组品种间POD 的活性比较 | 第61-63页 |
| ·PPO 活性变化 | 第63-65页 |
| ·对照组品种间PPO 的活性比较 | 第63页 |
| ·处理组品种间PPO 的活性比较 | 第63-65页 |
| ·PAL 活性变化 | 第65-67页 |
| ·对照组品种间PAL 的活性比较 | 第65页 |
| ·处理组品种间PAL 的活性比较 | 第65-67页 |
| ·CAT 活性变化 | 第67-69页 |
| ·对照组品种间CAT 的活性比较 | 第67页 |
| ·处理组品种间CAT 的活性比较 | 第67-69页 |
| 3 结论与讨论 | 第69-71页 |
| 结论 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 在读硕士期间发表的论文 | 第82-83页 |
| 附图 | 第83页 |
