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神经营养因子3诱导内皮祖细胞治疗大鼠下肢慢性缺血的实验研究

体外部分第4-43页
    中文摘要第4-6页
    abstract第6-10页
    1. 前言第10-17页
    2. 体外实验(实验材料与方法)第17-26页
        2.1 实验材料第17-19页
        2.2 实验方法第19-26页
    3. 体外实验(实验结果)第26-39页
        3.1. EPCS的培养与鉴定第26-27页
            3.1.1 形态学特征第26页
            3.1.2 鉴定第26-27页
        3.2. 大鼠原代神经元的培养和鉴定第27-29页
            3.2.1 大鼠原代神经元的培养第27-28页
            3.2.2 大鼠原代神经元的鉴定第28-29页
        3.3 条件性培养基的获得第29页
        3.4 EGM-2 培养基和条件性培养基分别培养EPCS,观察细胞的增殖和分化能力的变化第29-33页
            3.4.1 细胞数目的统计第29页
            3.4.2 细胞增殖能力的检测第29-31页
            3.4.3 细胞分化能力的检测第31-33页
        3.5 EPCS在不同浓度的NT-3 条件性培养基中的增殖及分化能力。第33-39页
            3.5.1 EPCs的生长曲线第33-34页
            3.5.2 鉴定EPCs的增殖能力第34-36页
            3.5.3 鉴定EPCs的分化能力第36-39页
    4. 体外实验(实验结论)第39-40页
    5. 体外实验(实验讨论)第40-43页
        1.神经生长因子与血管生成的关系第40-41页
        2.脑源性神经营养因子与血管生成第41页
        3.神经调节蛋白与血管生成第41-43页
体内部分第43-79页
    中文摘要第43-44页
    Abstract第44-45页
    6. 体内实验(实验材料与方法)第45-54页
        6.1 材料第45页
        6.2 实验方法第45-54页
    7. 体内实验(实验结果)第54-62页
        7.1 大鼠下肢慢性缺血模型第54-55页
        7.2 移植实验第55页
        7.3 多普勒超声仪测试结果第55-56页
        7.4 苏木精-伊红染色法(HEMATOXYLIN-EOSIN STAINING)鉴定移植的效果第56-58页
        7.5 免疫组化鉴定移植的效果第58-59页
        7.6 NT-3 条件性培养基中VEGF165的表达第59-61页
        7.7 NT-3 对于神经细胞的保护作用第61-62页
    8. 体内实验(实验讨论)第62-78页
    9. 体内实验(实验总结)第78-79页
10. 创新与不足第79-80页
11. 全文总结第80-81页
12. 参考文献第81-85页
13. 综述:神经营养因子-3 研究现状及展望第85-92页
    参考文献第88-92页
14. 缩略词表第92-93页
15. 在校期间发表论文第93-94页
16. 致谢第94-95页

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