| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 1 文献综述 | 第10-32页 |
| ·背景介绍 | 第10-12页 |
| ·光合作用概述 | 第10页 |
| ·光合作用基本过程 | 第10-12页 |
| ·PSⅡ的结构 | 第12-19页 |
| ·PSⅡ的整体结构 | 第12-14页 |
| ·蛋白组成 | 第14-15页 |
| ·辅因子 | 第15页 |
| ·质醌和非血红素铁 | 第15-16页 |
| ·放氧中心与水的分解 | 第16-18页 |
| ·脂类和去污剂 | 第18-19页 |
| ·其他成分 | 第19页 |
| ·PSⅡ电子传递及其研究进展 | 第19-23页 |
| ·PSⅡ的电子传递过程 | 第19-20页 |
| ·用于PSⅡ电子传递研究的外源电子受体 | 第20-21页 |
| ·电子传递机理的研究进展 | 第21-23页 |
| ·酶反应动力学在电子传递机理研究中的应用 | 第23-31页 |
| ·米氏方程 | 第23-25页 |
| ·Vmax和Km值的测定 | 第25-28页 |
| ·酶的抑制作用 | 第28-31页 |
| ·本论文研究的目的和意义 | 第31-32页 |
| 2 PSⅡ膜片段的制备与活性测定 | 第32-38页 |
| ·实验试剂与主要仪器 | 第32-35页 |
| ·实验试剂 | 第32页 |
| ·溶解氧分析系统 | 第32-34页 |
| ·其他实验仪器 | 第34-35页 |
| ·PSⅡ膜片段制备方法 | 第35-36页 |
| ·PSⅡ膜片段的制备 | 第35页 |
| ·叶绿素(Chl)含量的测定 | 第35-36页 |
| ·PSⅡ膜片段放氧活性的测定 | 第36页 |
| ·实验结果 | 第36-37页 |
| ·制备的PSⅡ膜片段的组分 | 第36页 |
| ·PSⅡ的叶绿素浓度 | 第36-37页 |
| ·PSⅡ的放氧活性 | 第37页 |
| ·小结 | 第37-38页 |
| 3 疏水电子受体与PSⅡ膜片段的结合及电子传递 | 第38-48页 |
| ·实验材料和主要设备 | 第38页 |
| ·实验材料和主要试剂 | 第38页 |
| ·主要仪器 | 第38页 |
| ·实验方法 | 第38-39页 |
| ·电子受体的配制 | 第38-39页 |
| ·PSⅡ放氧活性的测定 | 第39页 |
| ·数据处理及动力学分析 | 第39页 |
| ·结果与分析 | 第39-46页 |
| ·疏水电子受体浓度对PSⅡ放氧活性的影响 | 第39-43页 |
| ·疏水电子受体与PSⅡ相互作用的动力学分析 | 第43-46页 |
| ·小结 | 第46-48页 |
| 4 亲水电子受体与PSⅡ膜片段的结合及电子传递 | 第48-53页 |
| ·实验材料与主要设备 | 第48页 |
| ·实验材料与主要试剂 | 第48页 |
| ·主要仪器 | 第48页 |
| ·实验方法 | 第48页 |
| ·电子受体的配制 | 第48页 |
| ·PSⅡ放氧活性的测定 | 第48页 |
| ·数据处理及动力学分析 | 第48页 |
| ·结果与分析 | 第48-52页 |
| ·亲水性电子受体浓度对PSⅡ放氧活性的影响 | 第48-49页 |
| ·亲水性电子受体与PSⅡ相互作用的动力学分析 | 第49-52页 |
| ·小结 | 第52-53页 |
| 5 电子受体与PSⅡ结合位点的研究 | 第53-61页 |
| ·实验材料与主要设备 | 第53页 |
| ·实验材料与主要试剂 | 第53页 |
| ·主要仪器 | 第53页 |
| ·实验方法 | 第53-54页 |
| ·电子受体的配制 | 第53页 |
| ·DCBQ和K_3[Fe(CN)_6]同时存在时对PSⅡ放氧活性的影响 | 第53-54页 |
| ·DCMU与不同电子受体之间的竞争关系 | 第54页 |
| ·结果与分析 | 第54-60页 |
| ·DCBQ和K_3[Fe(CN)_6]同时存在时对PSⅡ放氧活性的影响及分析 | 第54-55页 |
| ·DCMU与电子受体的抑制作用 | 第55-60页 |
| ·小结 | 第60-61页 |
| 结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-67页 |
| 附录A 电子受体的名称、简写及结构式 | 第67-70页 |
| 附录B 英文縮写符号及中英文对照表 | 第70-71页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |