| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第1章绪论 | 第11-21页 |
| 1.1引言 | 第11页 |
| 1.2量子点在生物小分子检测中的应用 | 第11-14页 |
| 1.2.1荧光法 | 第12-13页 |
| 1.2.2电化学法 | 第13-14页 |
| 1.2.3其他方法 | 第14页 |
| 1.3纳米酶在生物小分子检测中的应用 | 第14-19页 |
| 1.3.1碳基纳米酶 | 第15-16页 |
| 1.3.2金属基纳米酶 | 第16-17页 |
| 1.3.3金属氧化物基纳米酶 | 第17-18页 |
| 1.3.4其他纳米酶 | 第18-19页 |
| 1.4本文研究内容及意义 | 第19-21页 |
| 第2章硫掺杂碳点修饰的双发射ZnCdTeQDs用于鸟嘌呤的比率荧光检测 | 第21-31页 |
| 2.1引言 | 第21页 |
| 2.2实验部分 | 第21-22页 |
| 2.2.1主要仪器和试剂 | 第21-22页 |
| 2.2.2碳点的合成 | 第22页 |
| 2.2.3CDs-ZnCdTeQDs的合成 | 第22页 |
| 2.2.4鸟嘌呤的测定 | 第22页 |
| 2.3结果与讨论 | 第22-30页 |
| 2.3.1CDs-ZnCdTeQDs的表征 | 第22-23页 |
| 2.3.2CDs-ZnCdTeQDs的光学性质 | 第23-25页 |
| 2.3.3CDs-ZnCdTeQDs的稳定性 | 第25页 |
| 2.3.4实验条件优化 | 第25-26页 |
| 2.3.5鸟嘌呤的比率荧光测定 | 第26-27页 |
| 2.3.6方法的选择性 | 第27-28页 |
| 2.3.7机理讨论 | 第28-30页 |
| 2.3.8DNA样品中鸟嘌呤的测定 | 第30页 |
| 2.4结论 | 第30-31页 |
| 第3章Quercetin@ZIF-90纳米颗粒作为一种新型的抗氧化物用于灵敏检测ATP | 第31-41页 |
| 3.1引言 | 第31-32页 |
| 3.2实验部分 | 第32-33页 |
| 3.2.1主要仪器和试剂 | 第32页 |
| 3.2.2QZ纳米颗粒的合成 | 第32页 |
| 3.2.3BSA-MnO2纳米片的合成 | 第32页 |
| 3.2.4ATP的测定 | 第32-33页 |
| 3.3结果与讨论 | 第33-40页 |
| 3.3.1QZ的表征 | 第33-34页 |
| 3.3.2MNs的表征及其氧化酶性质 | 第34-35页 |
| 3.3.3QZ的抗氧化性 | 第35-36页 |
| 3.3.4基于QZ检测ATP的方法构建 | 第36-39页 |
| 3.3.5“Off-On”比色分析法检测ATP | 第39-40页 |
| 3.3.6实际样品的测定 | 第40页 |
| 3.4结论 | 第40-41页 |
| 第4章金属-ATP纳米颗粒的酶活性调控研究及其在过氧化氢检测中的应用 | 第41-51页 |
| 4.1引言 | 第41页 |
| 4.2实验部分 | 第41-42页 |
| 4.2.1主要仪器和试剂 | 第41-42页 |
| 4.2.2CuMn-ATP的合成 | 第42页 |
| 4.2.3动力学分析 | 第42页 |
| 4.2.4过氧化氢的测定 | 第42页 |
| 4.3结果与讨论 | 第42-50页 |
| 4.3.1CuMn-ATP的双酶性质 | 第42-44页 |
| 4.3.2CuMn-ATP的表征 | 第44-46页 |
| 4.3.3催化机理讨论 | 第46-47页 |
| 4.3.4CuMn-ATP纳米酶的稳定性 | 第47-48页 |
| 4.3.5实验条件的优化 | 第48页 |
| 4.3.6过氧化氢的检测 | 第48-50页 |
| 4.4结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-66页 |
| 硕士期间研究成果 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
