摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-10页 |
英文缩略词表 | 第11-12页 |
第一章 引言 | 第12-20页 |
1.1 火龙果种质资源概述 | 第12页 |
1.2 分子标记在植物上的应用 | 第12-14页 |
1.3 SSR分子标记技术 | 第14-18页 |
1.3.1 SSR的定义及原理 | 第14-15页 |
1.3.2 SSR标记的优缺点 | 第15页 |
1.3.3 SSR标记的分类 | 第15-16页 |
1.3.4 SSR标记在植物上的应用 | 第16-18页 |
1.4 立题意义与技术路线 | 第18-19页 |
1.4.1 立题意义 | 第18页 |
1.4.2 技术路线 | 第18-19页 |
1.5 拟解决问题 | 第19-20页 |
第二章 转录组SSR位点分析及其分子标记的开发 | 第20-40页 |
2.1 研究材料 | 第20-25页 |
2.1.1 转录组数据来源 | 第20页 |
2.1.2 植物材料 | 第20-24页 |
2.1.3 药品耗材与仪器设备 | 第24页 |
2.1.4 主要试剂配制 | 第24-25页 |
2.2 方法 | 第25-29页 |
2.2.1 转录组数据分析及引物设计 | 第25-26页 |
2.2.2 基因组DNA提取 | 第26页 |
2.2.3 PCR反应体系的优化 | 第26-27页 |
2.2.4 退火温度的筛选 | 第27页 |
2.2.5 变性胶技术体系的优化 | 第27-28页 |
2.2.6 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳的制备 | 第28页 |
2.2.7 PCR产物检测 | 第28-29页 |
2.2.8 扩增体系稳定性验证 | 第29页 |
2.3 结果与分析 | 第29-37页 |
2.3.1 火龙果转录组序列中SSR的总体特点及出现频率 | 第29-31页 |
2.3.2 火龙果转录组序列中SSR基元分布 | 第31-32页 |
2.3.3 火龙果基因组DNA的提取 | 第32-33页 |
2.3.4 PCR体系的优化 | 第33页 |
2.3.5 引物退火温度筛选 | 第33-34页 |
2.3.6 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳技术体系 | 第34-35页 |
2.3.7 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳不同上样量 | 第35-36页 |
2.3.8 扩增体系稳定性验证 | 第36-37页 |
2.4 讨论 | 第37-40页 |
第三章 贵州火龙果种质遗传多样性评价 | 第40-52页 |
3.1 研究材料 | 第40页 |
3.1.1 植物材料 | 第40页 |
3.1.2 药品耗材与仪器设备 | 第40页 |
3.2 研究方法 | 第40-41页 |
3.2.1 形态性状调查 | 第40页 |
3.2.2 DNA提取与检测 | 第40页 |
3.2.3 EST-SSR反应体系 | 第40页 |
3.2.4 PCR扩增反应程序 | 第40-41页 |
3.2.5 电泳检测 | 第41页 |
3.2.6 数据处理 | 第41页 |
3.3 结果与分析 | 第41-49页 |
3.3.1 火龙果种质DNA提取 | 第41-42页 |
3.3.2 火龙果EST-SSR引物筛选 | 第42-43页 |
3.3.3 EST-SSR分子标记引物多态性分析 | 第43-44页 |
3.3.4 EST-SSR位点的验证及多样性 | 第44-46页 |
3.3.5 火龙果种质的亲缘关系分析 | 第46-47页 |
3.3.6 火龙果EST-SSR指纹图谱的构建 | 第47-49页 |
3.4 讨论 | 第49-52页 |
第四章 结论与展望 | 第52-54页 |
4.1 结论 | 第52-53页 |
1.火龙果EST-SSR位点分析 | 第52页 |
2.火龙果EST-SSR-PCR体系优化 | 第52页 |
3.火龙果EST-SSR标记分析 | 第52页 |
4.UPGMA聚类分析 | 第52页 |
5.火龙果EST-SSR指纹图谱构建 | 第52-53页 |
4.2 展望 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-65页 |
致谢 | 第65-66页 |
附录 论文发表情况 | 第66-67页 |