摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
缩略词 | 第9-13页 |
第一部分 文献综述 | 第13-27页 |
第一章 植物钙信号途径的研究进展 | 第13-18页 |
1 Ca~(2+)结合蛋白 | 第13-18页 |
1.1 CaM和CML家族 | 第13-15页 |
1.2 CDPK家族 | 第15-16页 |
1.3 CBL家族与CIPK蛋白激酶 | 第16-18页 |
第二章 CBL-CIPK信号网络的研究进展 | 第18-25页 |
1 CBL-CIPK参与植物逆境胁迫 | 第19-25页 |
1.1 CBL-CIPK与高盐胁迫 | 第19-21页 |
1.2 CBL-CIPK与低钾胁迫 | 第21-22页 |
1.3 CBL-CIPK与高pH胁迫 | 第22页 |
1.4 CBL-CIPK与低温与干旱胁迫 | 第22-23页 |
1.5 CBL-CIPK与氧化胁迫 | 第23页 |
1.6 CBL-CIPK与其他 | 第23-25页 |
第三章 本研究的目的和意义 | 第25-27页 |
1 研究目的和意义 | 第25-26页 |
2 技术路线 | 第26-27页 |
第二部分 研究论文 | 第27-65页 |
第一章 番茄SlCBL2基因的抗逆功能鉴定 | 第27-40页 |
1 前言 | 第27页 |
2 材料与方法 | 第27-30页 |
2.1 材料及相关培养基配置 | 第27-28页 |
2.2 SlCBL2转基因的抗逆性检测 | 第28-30页 |
3 结果分析 | 第30-38页 |
3.1 SlCBL2转基因植株抗高盐胁迫检测 | 第30-31页 |
3.2 SlCBL2转基因植株抗低钾胁迫检测 | 第31-33页 |
3.3 SlCBL2转基因植株抗氧化胁迫检测 | 第33-35页 |
3.4 SlCBL2转基因植株抗高pH胁迫检测 | 第35-38页 |
4 讨论 | 第38-40页 |
第二章 BIFC载体的改造及番茄SlCBL2与SlCIPKs互作的研究 | 第40-55页 |
1 前言 | 第40-41页 |
2 材料和方法 | 第41-48页 |
2.1 生化试剂 | 第41页 |
2.2 菌株及载体 | 第41-42页 |
2.3 BiFC载体改造及构建 | 第42页 |
2.4 番茄DNA基因组的提取 | 第42页 |
2.5 SlCBL2启动子的克隆 | 第42-45页 |
2.6 pCAMBIA1301-pSlCBL2-nEYFP-SlCBL2的构建 | 第45-47页 |
2.7 载体转化农杆菌 | 第47页 |
2.8 pCAMBIA1301-SlCIPKs-cEYFP的构建 | 第47页 |
2.9 本氏烟中瞬时表达,激光共聚焦观察荧光 | 第47-48页 |
3 结果分析 | 第48-54页 |
3.1 BiFC载体改造及构建 | 第48-49页 |
3.2 pCAMBIA1301-pSlCBL2-nEYFP- SlCBL2载体的构建 | 第49-50页 |
3.3 应用改造的BiFC载体平台研究SlCBL2与SlCIPKs的互作 | 第50-54页 |
4 讨论 | 第54-55页 |
第三章 NbCBL2基因与下游相关基因的表达分析 | 第55-65页 |
1 前言 | 第55页 |
2 材料与方法 | 第55-61页 |
2.1 材料培养及处理 | 第55页 |
2.2 烟草总RNA的提取 | 第55-56页 |
2.3 一链cDNA的合成 | 第56-57页 |
2.4 本氏烟NbCBL2基因的表达分析 | 第57-59页 |
2.5 下游相关基因定量表达分析 | 第59-61页 |
3 结果分析 | 第61-64页 |
3.1 烟草总RNA的提取 | 第61页 |
3.2 NbCBL2基因在不同组织中的表达 | 第61-62页 |
3.3 NbCBL2基因在高pH处理下的表达 | 第62页 |
3.4 下游相关基因的荧光定量表达 | 第62-64页 |
4 讨论 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-74页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第74-75页 |
致谢 | 第75-77页 |