| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 英文缩略语表 | 第10-11页 |
| 第1章 前言 | 第11-19页 |
| 1.1 孤独症的发病机制 | 第11-12页 |
| 1.2 孤独症动物模型研究进展 | 第12-14页 |
| 1.2.1 基因敲除动物模型 | 第12-13页 |
| 1.2.2 感染因素诱导动物模型 | 第13页 |
| 1.2.3 化学因素诱导动物模型 | 第13-14页 |
| 1.3 VPA诱导的孤独症动物模型的研究进展 | 第14-16页 |
| 1.3.1 VPA诱导的孤独症模型鼠的生长发育和行为学表现 | 第14-15页 |
| 1.3.2 VPA诱导的孤独症模型鼠脑组织结构上的变化 | 第15-16页 |
| 1.3.3 VPA诱导的孤独症模型鼠的分子机制 | 第16页 |
| 1.4 孤独症转录组学研究进展 | 第16-18页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第18-19页 |
| 第2章 孤独症动物模型的建立 | 第19-27页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-20页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第19页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第19页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第19页 |
| 2.1.4 主要溶液的配制 | 第19-20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-22页 |
| 2.2.1 孤独症动物模型的建立和分组 | 第20页 |
| 2.2.2 大鼠阴道涂片检查 | 第20页 |
| 2.2.3 生长发育和行为学测试 | 第20-21页 |
| 2.2.4 数据分析 | 第21-22页 |
| 2.3 实验结果 | 第22-25页 |
| 2.3.1 精子涂片检查结果 | 第22页 |
| 2.3.2 生长发育变化 | 第22-24页 |
| 2.3.3 社会交往测试结果 | 第24-25页 |
| 2.4 讨论 | 第25-27页 |
| 第3章 转录组测序和分析 | 第27-53页 |
| 3.1 实验材料 | 第27页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第27页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第27页 |
| 3.1.3 主要仪器和耗材 | 第27页 |
| 3.2 实验方法 | 第27-34页 |
| 3.2.1 孤独症动物模型的建立和分组 | 第27-28页 |
| 3.2.2 SD大鼠前额叶的分离 | 第28页 |
| 3.2.3 总RNA提取实验 | 第28页 |
| 3.2.4 转录组测序 | 第28-34页 |
| 3.3 实验结果 | 第34-48页 |
| 3.3.1 前额叶总RNA的提取及质量检测结果 | 第34页 |
| 3.3.2 测序数据产量统计和质量评估 | 第34-35页 |
| 3.3.3 参考序列比对分析结果 | 第35-38页 |
| 3.3.4 基因差异表达分析 | 第38-42页 |
| 3.3.5 差异基因GO功能分析结果 | 第42-45页 |
| 3.3.6 差异基因KEGG富集分析结果 | 第45-48页 |
| 3.4 讨论 | 第48-53页 |
| 第4章 VPA大鼠孤独症模型看家基因的筛选 | 第53-65页 |
| 4.1 实验材料 | 第53-54页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第53页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第53页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第53页 |
| 4.1.4 主要溶液的配制 | 第53-54页 |
| 4.2 实验方法 | 第54-57页 |
| 4.2.1 孤独症动物模型的建立和分组 | 第54页 |
| 4.2.2 总RNA的提取 | 第54页 |
| 4.2.3 第一条cDNA链的制备 | 第54-55页 |
| 4.2.4 qRT-PCR | 第55-56页 |
| 4.2.5 数据分析 | 第56-57页 |
| 4.3 实验结果 | 第57-63页 |
| 4.3.1 候选内参基因的原始Cq值比较 | 第57-58页 |
| 4.3.2 geNorm分析结果 | 第58-59页 |
| 4.3.3 Bestkeeper分析结果 | 第59页 |
| 4.3.4 Normfinder分析结果 | 第59页 |
| 4.3.5 RefFinder分析结果 | 第59-60页 |
| 4.3.6 候选内参基因不同时间点前额叶和海马Pgrn的mRNA表达水平变化 | 第60-63页 |
| 4.4 讨论 | 第63-65页 |
| 第5章 总结 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-79页 |
| 致谢 | 第79-81页 |
| 攻读硕士期间的研究成果 | 第81页 |
