首页--农业科学论文--畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂论文--家畜论文--羊论文

绵羊KISSPEPTIN-53基因表达及生物活性检测

摘要第8-9页
ABSTRACT第9-10页
中英文缩略词表(Abbreviation)第11-12页
1 文献综述第12-24页
    1.1 Kisspeptin研究进展第12-18页
        1.1.1 Kisspeptin和GPR54的发现第12-14页
        1.1.2 Kisspeptin和GPR54的分布第14页
        1.1.3 Kisspeptin/GPR54系统的功能第14-18页
            1.1.3.1 启动动物初情期的作用第14-15页
            1.1.3.2 对动物季节性繁殖的调控第15-16页
            1.1.3.3 对母羊生殖内分泌的调控作用第16-18页
    1.2 毕赤酵母表达系统第18-23页
        1.2.1 毕赤酵母表达系统的特点第18-19页
        1.2.2 毕赤酵母表达系统的组成第19-20页
            1.2.2.1 表达宿主第19-20页
            1.2.2.2 表达载体第20页
        1.2.3 毕赤酵母表达的影响因素第20-23页
            1.2.3.1 外源基因的影响第20-21页
            1.2.3.2 培养条件的影响第21-23页
    1.3 本研究的目的与意义第23-24页
2 材料和方法第24-41页
    2.1 试验材料第24-28页
        2.1.1 主要材料第24页
        2.1.2 主要试剂与药品第24-25页
        2.1.3 主要仪器设备第25-26页
        2.1.4 主要试剂的配制第26-28页
    2.2 试验方法第28-41页
        2.2.1 基因与载体准备第28-31页
            2.2.1.1 基因优化与合成第28-29页
            2.2.1.2 pPICZαA质粒保种菌培养及质粒提取第29-30页
            2.2.1.3 目的基因与载体的酶切鉴定第30页
            2.2.1.4 酶切产物的回收第30-31页
        2.2.2 pPICZαA-Kp53重组载体的构建第31-33页
            2.2.2.1 目的基因与载体连接第31页
            2.2.2.2 连接产物转化到大肠杆菌Trans5a感受态细胞第31页
            2.2.2.3 挑取单菌落扩大培养第31-32页
            2.2.2.4 菌液PCR鉴定第32页
            2.2.2.5 阳性菌液质粒小提第32-33页
            2.2.2.6 酶切鉴定第33页
        2.2.3 重组表达载体的转化第33-36页
            2.2.3.1 毕赤酵母GS115感受态细胞制备第33-34页
            2.2.3.2 重组载体线性化第34页
            2.2.3.3 线性化产物提取第34-35页
            2.2.3.4 线性化产物电转第35页
            2.2.3.5 阳性转化子鉴定第35-36页
        2.2.4 毕赤酵母阳性转化子的诱导表达第36页
        2.2.5 BCA法检测发酵上清蛋白浓度第36-37页
        2.2.6 Tricine-SDS-PAGE鉴定第37-38页
            2.2.6.1 样品准备第37页
            2.2.6.2 Tricine-SDS-PAGE胶制备及电泳第37-38页
            2.2.6.3 条带显色第38页
        2.2.7 WesternBlot检测第38-39页
            2.2.7.1 转膜第38页
            2.2.7.2 清洗与封闭第38-39页
            2.2.7.3 抗体孵育第39页
            2.2.7.4 ECL化学发光第39页
        2.2.8 诱导表达条件的优化第39-40页
            2.2.8.1 诱导时间第39-40页
            2.2.8.2 诱导温度第40页
            2.2.8.3 甲醇浓度第40页
        2.2.9 诱导产物的纯化第40-41页
        2.2.10 纯化产物Kp53的生物活性研究第41页
3 结果与分析第41-52页
    3.1 表达载体与目的基因的鉴定第41-42页
        3.1.1 pPICZαA载体的双酶切鉴定第41-42页
        3.1.2 目的基因的双酶切鉴定第42页
    3.2 重组表达质粒的构建第42-44页
        3.2.1 重组表达质粒的酶切鉴定第42-43页
        3.2.2 重组表达质粒的PCR鉴定第43-44页
        3.2.3 测序鉴定第44页
    3.3 阳性转化子的PCR鉴定第44页
    3.4 阳性转化子测序鉴定第44-45页
    3.5 上清总蛋白浓度的BCA法检测第45页
    3.6 阳性转化子诱导表达产物的检测第45-46页
    3.7 诱导表达条件的优化第46-49页
        3.7.1 诱导时间的优化第46-48页
        3.7.2 诱导温度的优化第48页
        3.7.3 诱导甲醇浓度的优化第48-49页
    3.8 诱导产物的纯化及Western Blot分析第49-50页
    3.9 表达产物的生物活性研究第50-51页
    3.10 绵羊Kp53对生殖激素LH和FSH的影响第51-52页
4 讨论第52-56页
    4.1 绵羊Kp53的诱导表达与纯化第52-53页
    4.2 诱导表达条件的优化第53-54页
    4.3 吻素对生殖激素LH和FSH的影响第54-56页
5 结论与下一步研究建议第56-57页
    5.1 结论第56页
    5.2 下一步研究建议第56-57页
参考文献第57-63页
在读期间的学术成果第63-64页
致谢第64页

论文共64页,点击 下载论文
上一篇:ANXA8基因调控猪子宫内膜细胞增殖作用的机理研究
下一篇:GPX1通过NFκB通路调节COX2参与哺乳动物分娩启动