| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 缩写词 | 第12-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-25页 |
| 1.1 研究背景 | 第13页 |
| 1.2 农副产品的资源化 | 第13-15页 |
| 1.2.1 农副产品的化学结构 | 第13-14页 |
| 1.2.2 农副产品的综合利用 | 第14页 |
| 1.2.3 农副产品利用存在问题 | 第14-15页 |
| 1.3 纤维原料制备乙醇的研究 | 第15-23页 |
| 1.3.1 乙醇的生产流程 | 第15页 |
| 1.3.2 原料的预处理 | 第15-16页 |
| 1.3.3 纤维素水解糖化 | 第16-20页 |
| 1.3.4 乙醇发酵 | 第20-23页 |
| 1.4 本课题研究的目的、意义及主要内容 | 第23-25页 |
| 1.4.1 研究价值与意义 | 第23-24页 |
| 1.4.2 主要研究内容 | 第24-25页 |
| 第2章 Neurospora.crassa固态发酵农副产品产纤维素酶的培养基优化 | 第25-42页 |
| 2.1 引言 | 第25页 |
| 2.2 实验试剂与仪器设备 | 第25-26页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第25-26页 |
| 2.2.2 主要仪器设备 | 第26页 |
| 2.3 实验材料 | 第26-27页 |
| 2.3.1 纤维原料 | 第26-27页 |
| 2.3.2 菌种 | 第27页 |
| 2.3.3 培养基 | 第27页 |
| 2.4 实验方法 | 第27-33页 |
| 2.4.1 纤维原料的成分测定 | 第27-28页 |
| 2.4.2 孢子悬浮液的制备 | 第28-29页 |
| 2.4.3 培养条件 | 第29页 |
| 2.4.4 粗酶提取液的制备 | 第29页 |
| 2.4.5 纤维素酶酶活测定方法 | 第29-32页 |
| 2.4.6 Plackett-Burman实验设计 | 第32页 |
| 2.4.7最陡爬坡试验设计 | 第32-33页 |
| 2.4.8 中心组合（CCD）实验设计 | 第33页 |
| 2.4.9 统计分析 | 第33页 |
| 2.5 实验结果 | 第33-40页 |
| 2.5.0 纤维原料的成分分析 | 第33-34页 |
| 2.5.1 粗壮脉纹孢菌固态发酵不同农副产物产纤维素酶能力比较 | 第34-35页 |
| 2.5.2 粗壮脉纹孢菌在混合原料中纤维素酶能力比较 | 第35页 |
| 2.5.3 Plackett-Burman实验筛选产酶培养基主要影响因素 | 第35-37页 |
| 2.5.4 主要影响因素最陡爬坡实验 | 第37页 |
| 2.5.5 响应面法优化培养基配方 | 第37-40页 |
| 2.5.6 验证试验 | 第40页 |
| 2.5.7 优化前后的对比试验 | 第40页 |
| 2.6 讨论 | 第40-41页 |
| 2.6.1 产纤维素酶最佳原料的筛选 | 第40-41页 |
| 2.6.2 响应面法优化粗壮脉纹孢菌产酶培养基 | 第41页 |
| 2.7 本章小结 | 第41-42页 |
| 第3章 Neurospora.crassa降解纤维原料产可发酵糖培养条件的研究 | 第42-54页 |
| 3.1 引言 | 第42页 |
| 3.2 实验试剂与仪器设备 | 第42-43页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第42页 |
| 3.2.2 主要仪器设备 | 第42-43页 |
| 3.3 实验材料 | 第43页 |
| 3.3.1 纤维原料 | 第43页 |
| 3.3.2 菌种 | 第43页 |
| 3.3.3 培养基 | 第43页 |
| 3.4 实验方法 | 第43-46页 |
| 3.4.1 孢子悬浮液的制备 | 第43-44页 |
| 3.4.2 培养条件 | 第44页 |
| 3.4.3 还原糖的提取与测定 | 第44页 |
| 3.4.4 单因素试验 | 第44-45页 |
| 3.4.5 正交实验设计 | 第45-46页 |
| 3.5 实验结果 | 第46-51页 |
| 3.5.1 粗壮脉纹孢菌降解纤维原料产还原糖条件的单因素优化结果 | 第46-49页 |
| 3.5.3 正交实验优化结果及其分析 | 第49-50页 |
| 3.5.4 最佳培养条件的验证实验 | 第50页 |
| 3.5.5 培养过程中还原糖含量的变化 | 第50-51页 |
| 3.6 讨论 | 第51-52页 |
| 3.6.1 初始pH、料液比和发酵温度还原糖产量的影响 | 第51-52页 |
| 3.6.2 种龄和接种量对于还原糖产量的影响 | 第52页 |
| 3.7 本章小结 | 第52-54页 |
| 第4章 纤维降解物发酵产乙醇的研究 | 第54-66页 |
| 4.1 引言 | 第54-55页 |
| 4.2 实验试剂与仪器设备 | 第55-56页 |
| 4.2.1 主要试剂 | 第55页 |
| 4.2.2 主要仪器设备 | 第55-56页 |
| 4.3 实验材料 | 第56页 |
| 4.3.1 纤维原料降解物的制备 | 第56页 |
| 4.3.2 试验菌种 | 第56页 |
| 4.3.3 菌种活化培养基 | 第56页 |
| 4.4 实验方法 | 第56-59页 |
| 4.4.1 气相色谱法测定降解物中可发酵糖的单糖组成 | 第56-58页 |
| 4.4.2 乙醇的不同发酵方法 | 第58-59页 |
| 4.4.3 还原糖含量的测定 | 第59页 |
| 4.4.4 乙醇含量的测定 | 第59页 |
| 4.5 实验结果 | 第59-63页 |
| 4.5.1 粗糖提取液的纯化 | 第59-60页 |
| 4.5.2 可发酵糖单糖组分的研究 | 第60-62页 |
| 4.5.3 以葡萄糖为碳源的三种酵母菌发酵能力比较 | 第62-63页 |
| 4.5.4 三种酵母菌不同发酵方法的产乙醇能力的比较 | 第63页 |
| 4.6 讨论 | 第63-65页 |
| 4.6.1 降解产物中的单糖的纯化处理 | 第63-64页 |
| 4.6.2 单糖组分的气相检测 | 第64页 |
| 4.6.3 纤维乙醇发酵菌株的筛选 | 第64-65页 |
| 4.7 本章小结 | 第65-66页 |
| 第5章 利用Issatchenkia orientalis制备乙醇的工艺研究 | 第66-75页 |
| 5.1 引言 | 第66页 |
| 5.2 实验试剂与仪器设备 | 第66-67页 |
| 5.2.1 主要试剂 | 第66-67页 |
| 5.2.2 主要仪器设备 | 第67页 |
| 5.3 实验材料 | 第67-68页 |
| 5.3.1 纤维原料的糖化 | 第67页 |
| 5.3.2 菌种 | 第67页 |
| 5.3.3 培养基 | 第67-68页 |
| 5.4 实验方法 | 第68-69页 |
| 5.4.1 发酵时间对乙醇产量的影响 | 第68页 |
| 5.4.2 料液比对乙醇产量的影响 | 第68页 |
| 5.4.3 酵母菌接种量对乙醇产量的影响 | 第68页 |
| 5.4.4 氮源添加量对乙醇产量的影响 | 第68页 |
| 5.4.5 温度对乙醇产量的影响 | 第68页 |
| 5.4.6 发酵残渣的纤维组成 | 第68-69页 |
| 5.5 实验结果 | 第69-72页 |
| 5.5.1 发酵时间对乙醇产量的影响 | 第69页 |
| 5.5.2 料液比对乙醇产量的影响 | 第69-70页 |
| 5.5.3 酵母菌接种量对乙醇产量的影响 | 第70-71页 |
| 5.5.4 氮源添加量对乙醇产量的影响 | 第71页 |
| 5.5.5 温度对乙醇产量的影响 | 第71-72页 |
| 5.5.6 发酵残渣中的纤维成分分析 | 第72页 |
| 5.6 讨论 | 第72-74页 |
| 5.6.1 发酵时间、料液比对乙醇产量的影响 | 第72-73页 |
| 5.6.2 酵母菌接种量、氮源添加量和发酵温度对乙醇产量的影响 | 第73-74页 |
| 5.7 本章小结 | 第74-75页 |
| 第6章 结论与展望 | 第75-77页 |
| 6.1 结论 | 第75-76页 |
| 6.1.1 Neurospora.crassa固态发酵农副产品产纤维素酶的培养基优化 | 第75页 |
| 6.1.2 Neurospora.crassa降解纤维原料产可发酵糖培养条件研究 | 第75页 |
| 6.1.3 纤维降解物发酵产乙醇的研究 | 第75页 |
| 6.1.4 利用Issatchenkia orientalis制备纤维乙醇的工艺研究 | 第75-76页 |
| 6.2 进一步工作的方向 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-85页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第85页 |
