摘要 | 第7-9页 |
ABSTRACT | 第9-10页 |
致谢 | 第11-17页 |
缩写词简表 | 第17-18页 |
1 前言 | 第18-20页 |
2 材料和方法 | 第20-33页 |
2.1 实验材料 | 第20页 |
2.2 主要试剂 | 第20-22页 |
2.3 实验仪器 | 第22-23页 |
2.4 实验方法 | 第23-32页 |
2.4.1 海带多糖的提取 | 第23页 |
2.4.2 海带多糖的分离纯化 | 第23页 |
2.4.3 海带多糖均一组分LJP61A的理化性质分析 | 第23-24页 |
2.4.4 海带多糖均一组分LJP61A的结构鉴定 | 第24-25页 |
2.4.5 LJP61A的体内抗动脉粥样硬化活性 | 第25-28页 |
2.4.6 LJP61A对oxLDL诱导巨噬细胞源性泡沫化细胞形成的抑制作用及调控机制 | 第28-32页 |
2.5 数据收集与统计分析 | 第32-33页 |
3 结果与分析 | 第33-58页 |
3.1 海带多糖的提取、分离与纯化 | 第33页 |
3.2 海带多糖均一组分LJP61A的理化性质分析 | 第33-34页 |
3.3 海带多糖均一组分LJP61A的结构鉴定 | 第34-42页 |
3.3.1 红外光谱分析 | 第34-35页 |
3.3.2 单糖组成分析 | 第35-36页 |
3.3.3 甲基化分析 | 第36页 |
3.3.4 核磁共振波谱分析 | 第36-42页 |
3.4 LJP61A的体内抗动脉粥样硬化活性 | 第42-46页 |
3.4.1 LJP61A对小鼠脂质代谢的影响 | 第42-43页 |
3.4.2 主动脉的病理学研究 | 第43-44页 |
3.4.3 巨噬细胞CD68的免疫组化 | 第44-45页 |
3.4.4 LJP61A对小鼠血管炎性因子含量的影响 | 第45页 |
3.4.5 LJP61A对血管中炎性因子mRNA表达的影响 | 第45-46页 |
3.5 LJP61A对oxLDL诱导巨噬细胞源性泡沫化细胞形成的抑制作用及调控机制 | 第46-58页 |
3.5.1 LJP61A对RAW264.7细胞生长的影响 | 第46-47页 |
3.5.2 油红O染色分析 | 第47页 |
3.5.3 LJP61A对oxLDL诱导的RAW264.7细胞TC、FC、CE含量的影响 | 第47-48页 |
3.5.4 LJP61A对Raw264.7细胞摄取oxLDL的影响 | 第48页 |
3.5.5 LJP61A对oxLDL诱导的Raw264.7细胞释放细胞因子的影响 | 第48-49页 |
3.5.6 LJP61A对oxLDL诱导的RAW264.7细胞TNF-α和IL-1β mRNA表达的影响 | 第49-50页 |
3.5.7 LJP61A对oxLDL诱导的RAW264.7细胞CD36、PPAR-γ、ABCA1、SR-B1、ACAT-1和mTOR mRNA表达的影响 | 第50-51页 |
3.5.8 LJP61A对oxLDL诱导的RAW264.7细胞CD36、ABCA1、SR-B1蛋白表达的影响 | 第51-53页 |
3.5.9 LJP61A对oxLDL诱导的RAW264.7细胞NF-κB信号通路蛋白表达的影响 | 第53-54页 |
3.5.10 LJP61A对oxLDL诱导的RAW264.7细胞MAPK信号通路蛋白表达的影响 | 第54-55页 |
3.5.11 LJP61A对oxLDL诱导的RAW264.7细胞TLR 2和TLR 4 mRNA的影响 | 第55-56页 |
3.5.12 LJP61A对oxLDL诱导的RAW264.7细胞TLR 2和TLR 4蛋白表达的影响 | 第56-58页 |
4 讨论 | 第58-62页 |
5 结论与展望 | 第62-64页 |
5.1 结论 | 第62页 |
5.2 展望 | 第62-64页 |
参考文献 | 第64-71页 |
攻读硕士期间发表论文 | 第71页 |