| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 文中所用的縮略号 | 第11-17页 |
| 第一章 前言 | 第17-32页 |
| 1.1 概述 | 第17页 |
| 1.2 引起果实无核的原因 | 第17-20页 |
| 1.2.1 雄性不育 | 第17-19页 |
| 1.2.2 胚囊育性下降 | 第19页 |
| 1.2.3 胚胎败育 | 第19-20页 |
| 1.2.4 自交不亲和 | 第20页 |
| 1.3 植物自交不亲和 | 第20-24页 |
| 1.3.1 同型自交不亲和机制研究进展 | 第21-22页 |
| 1.3.2 与S-RNase相关的GSI机制 | 第22-23页 |
| 1.3.3 罂粟科GSI机制 | 第23-24页 |
| 1.3.4 GSI过程相关的其它因子 | 第24页 |
| 1.4 果树自交不亲和相关研究进展 | 第24-27页 |
| 1.4.1 果树S-RNase研究进展 | 第25-26页 |
| 1.4.2 果树F-box基因研究进展 | 第26-27页 |
| 1.5 柑橘自交不亲和相关研究 | 第27-29页 |
| 1.6 RNA-Seq的应用 | 第29-30页 |
| 1.7 本研究的目的和意义 | 第30-32页 |
| 1.7.1 本研究的目的和意义 | 第30-31页 |
| 1.7.2 本研究的主要内容 | 第31-32页 |
| 第二章 柠檬、莱檬和藜檬等39份种质资源亲缘关系 | 第32-40页 |
| 2.1 材料与方法 | 第32-34页 |
| 2.1.1 材料 | 第32-34页 |
| 2.1.2 DNA提取与检测 | 第34页 |
| 2.1.3 SCoT分子标记扩增与检测 | 第34页 |
| 2.1.4 ISSR分子标记扩增与检测 | 第34页 |
| 2.1.5 数据分析 | 第34页 |
| 2.2 结果与分析 | 第34-39页 |
| 2.2.1 39份样品的DNA提取质量 | 第34-35页 |
| 2.2.2 SCoT和ISSR的多态性分析 | 第35-37页 |
| 2.2.3 亲缘关系分析 | 第37-39页 |
| 2.3 小结与讨论 | 第39-40页 |
| 第三章 香水柠檬无籽成因研究 | 第40-51页 |
| 3.1 材料与方法 | 第40-42页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第40页 |
| 3.1.2 雄配子育性 | 第40-41页 |
| 3.1.3 人工授粉试验 | 第41页 |
| 3.1.4 胚囊和胚胎发育过程观察 | 第41-42页 |
| 3.1.5 花粉管伸长的荧光显微观察 | 第42页 |
| 3.1.6 数据分析 | 第42页 |
| 3.2 结果与分析 | 第42-49页 |
| 3.2.1 雄配子育性 | 第42-45页 |
| 3.2.2 人工授粉试验 | 第45-46页 |
| 3.2.3 雌配子体发育 | 第46-47页 |
| 3.2.4 胚胎发育 | 第47-48页 |
| 3.2.5 授粉后花粉管生长 | 第48-49页 |
| 3.3 小结与讨论 | 第49-51页 |
| 第四章 香水柠檬转录组测序和分析 | 第51-102页 |
| 4.1 植物材料 | 第51页 |
| 4.2 方法 | 第51-56页 |
| 4.2.1 RNA的提取与纯化 | 第51-52页 |
| 4.2.2 文库的构建与测序 | 第52页 |
| 4.2.3 测序分析 | 第52-53页 |
| 4.2.4 SSR分布与引物设计 | 第53-54页 |
| 4.2.5 SSR引物扩增与检测 | 第54页 |
| 4.2.6 差异基因筛选 | 第54页 |
| 4.2.7 差异表达基因的定量分析 | 第54-56页 |
| 4.3 结果与分析 | 第56-98页 |
| 4.3.1 样品RNA质量检测 | 第56-57页 |
| 4.3.2 测序数据量统计 | 第57页 |
| 4.3.3 测序结果与参考基因比对统计 | 第57-60页 |
| 4.3.4 测序标签组装 | 第60-66页 |
| 4.3.5 组装所得Unigene的功能注释与分类 | 第66-78页 |
| 4.3.6 Unigene编码的蛋白框 | 第78-79页 |
| 4.3.7 SSR类型及分布频率 | 第79-82页 |
| 4.3.8 SSR引物开发 | 第82-86页 |
| 4.3.9 SSR引物的应用 | 第86-88页 |
| 4.3.10 基因表达差异分析 | 第88-97页 |
| 4.3.11 差异表达基因的定量分析 | 第97-98页 |
| 4.4 小结与讨论 | 第98-102页 |
| 第五章 自交不亲和相关基因的克隆与表达分析 | 第102-124页 |
| 5.1 植物材料 | 第102页 |
| 5.2 主要试剂 | 第102页 |
| 5.3 方法 | 第102-104页 |
| 5.3.1 RNA的提取纯化与cDNA合成 | 第102页 |
| 5.3.2 S-RNase和F-box基因全长的克隆 | 第102-104页 |
| 5.3.3 S-RNase和F-box基因DNA序列的克隆 | 第104页 |
| 5.3.4 S-RNase和F-box基因的生物信息学分析 | 第104页 |
| 5.3.5 香水柠檬S-RNase和F-box基因的表达分析 | 第104页 |
| 5.4 结果与分析 | 第104-122页 |
| 5.4.1 基因全长的获得 | 第104页 |
| 5.4.2 基因生物信息学分析 | 第104-111页 |
| 5.4.3 基因同源比对分析 | 第111-112页 |
| 5.4.4 香水柠檬S-RNase和F-box基因在不同组织表达特性分析 | 第112-114页 |
| 5.4.5 香水柠檬ClSl基因授粉后不同时期表达特性分析 | 第114-116页 |
| 5.4.6 ClS2基因授粉后不同时期表达特性分析 | 第116-120页 |
| 5.4.7 ClF-box基因在授粉后不同时期表达特性分析 | 第120-122页 |
| 5.5 小结与讨论 | 第122-124页 |
| 第六章 自交不亲和相关基因的功能研究 | 第124-131页 |
| 6.1 试验材料 | 第124页 |
| 6.1.1 植物材料 | 第124页 |
| 6.1.2 菌株与质粒 | 第124页 |
| 6.1.3 主要试剂 | 第124页 |
| 6.2 方法 | 第124-126页 |
| 6.2.1 载体构建方法与步骤 | 第124-126页 |
| 6.2.2 表达载体转化农杆菌EHA105 | 第126页 |
| 6.2.3 农杆菌EHA105介导的烟草遗传转化与植株再生 | 第126页 |
| 6.3 结果与分析 | 第126-129页 |
| 6.3.1 基因载体构建结果 | 第126-128页 |
| 6.3.2 转基因烟草的获得与分子鉴定 | 第128-129页 |
| 6.4 小结与讨论 | 第129-131页 |
| 第七章 全文总结 | 第131-133页 |
| 7.1 全文主要结论 | 第131-132页 |
| 7.2 创新点 | 第132页 |
| 7.3 后续研究计划 | 第132-133页 |
| 致谢 | 第133-134页 |
| 参考文献 | 第134-150页 |
| 附录 | 第150页 |
