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抗猪轮状病毒单克隆抗体的制备及双抗体夹心ELISA检测方法的初步建立

摘要第8-9页
Abstract第9-10页
1 前言第11-18页
    1.1 PRV病原学特征第11-14页
        1.1.1 PRV的形态结构和理化性质第11-12页
        1.1.2 轮状病毒的培养特性第12-13页
        1.1.3 轮状病毒的抗原分型第13页
        1.1.4 轮状病毒的基因组结构、蛋白及功能第13-14页
    1.2 轮状病毒的诊断方法第14-16页
        1.2.1 猪轮状病毒临床诊断第14-15页
        1.2.2 猪轮状病毒实验室诊断第15-16页
    1.3 单克隆抗体的研究进展第16页
        1.3.1 单克隆抗体的概述第16页
        1.3.2 抗PRV单克隆抗体的研究进展第16页
    1.4 研究的目的意义第16-18页
2 材料与方法第18-30页
    2.1 试验材料第18-21页
        2.1.1 细胞与病毒第18页
        2.1.2 实验动物第18页
        2.1.3 临床粪便样品第18页
        2.1.4 培养基和主要试剂第18页
        2.1.5 主要试剂的配制第18-21页
        2.1.6 主要实验仪器设备第21页
    2.2 试验方法第21-30页
        2.2.1 免疫原的制备第21-22页
        2.2.2 免疫动物第22页
        2.2.3 杂交瘤筛选方法的建立第22-23页
        2.2.4 杂交瘤细胞株的建立与筛选第23-24页
        2.2.5 单克隆抗体效价的测定第24-25页
        2.2.6 单克隆抗体生物学特性鉴定第25-26页
        2.2.7 双抗体夹心ELISA方法的初步建立第26-27页
        2.2.8 双抗体夹心ELISA方法优化第27-28页
        2.2.9 双抗体夹心ELISA方法的灵敏性试验第28页
        2.2.10 双抗体夹心ELISA方法的特异性试验第28页
        2.2.11 双抗体夹心ELISA方法的重复性试验第28-29页
        2.2.12 双抗体夹心ELISA方法检测临床样品第29-30页
3 结果第30-42页
    3.1 PRV的增殖及鉴定第30页
        3.1.1 PRV的增殖第30页
        3.1.2 PRV JL94株TCID_(50)的测定第30页
        3.1.3 PRV病毒的纯化第30页
    3.2 杂交瘤细胞株筛选方法的建立第30-31页
    3.3 杂交瘤细胞株建立和筛选第31-32页
    3.4 单克隆抗体效价的测定第32页
    3.5 单克隆抗体生物学特性鉴定第32-34页
        3.5.1 单克隆抗体亚类鉴定第32页
        3.5.2 杂交瘤细胞染色体计数第32页
        3.5.3 杂交瘤细胞分泌单克隆抗体稳定性的鉴定结果第32-33页
        3.5.4 单克隆抗体针对的抗原表位鉴定结果第33页
        3.5.5 间接免疫荧光试验结果第33-34页
        3.5.6 单克隆抗体的特异性分析第34页
    3.6 双抗体夹心ELISA方法的初步建立及应用第34-42页
        3.6.1 兔抗PRV抗血清纯度鉴定及其浓度测定第34-35页
        3.6.2 兔抗PRV抗血清与McAb上清最佳工作浓度的确定第35页
        3.6.3 双抗体夹心ELISA方法优化第35-38页
        3.6.4 双抗体夹心ELISA方法灵敏性试验第38页
        3.6.5 双抗体夹心ELISA方法特异性试验第38-39页
        3.6.6 双抗体夹心ELISA方法重复性试验第39页
        3.6.7 临床样品处理液的选择第39-40页
        3.6.8 临床样品的检测第40-42页
4 讨论第42-45页
    4.1 以病毒为抗原制备单克隆抗体的优势第42页
    4.2 抗PRV单克隆抗体用作检测试剂的特性分析第42页
    4.3 双抗体夹心ELISA法的建立第42-43页
    4.4 单克隆抗体制备过程中的几个重要环节第43-45页
5 结论第45-46页
致谢第46-47页
参考文献第47-51页
攻读硕士学位期间发表的学术论文第51页

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