| 中文摘要 | 第20-24页 |
| ABSTRACT | 第24-28页 |
| 符号说明 | 第29-31页 |
| 前言 | 第31-47页 |
| 1. 癌症概况及治疗现状 | 第31-33页 |
| 2. 营养与癌症预防 | 第33-35页 |
| 3. 大蒜及其有机硫化物抗癌活性现状 | 第35-38页 |
| 4. 本研究的目的意义和主要内容 | 第38-40页 |
| 参考文献 | 第40-47页 |
| 第一部分 SAMC抗肿瘤作用及机制研究 | 第47-103页 |
| 前言 | 第47-49页 |
| 第一章 SAMC的抗肿瘤活性研究 | 第49-56页 |
| 1. 实验材料 | 第49-50页 |
| 1.1 药品和试剂 | 第49页 |
| 1.2 细胞和动物 | 第49-50页 |
| 1.3 仪器设备 | 第50页 |
| 2. 实验方法 | 第50-52页 |
| 2.1 肿瘤细胞生长抑制试验 | 第50-51页 |
| 2.2 裸鼠肿瘤生长抑制试验 | 第51页 |
| 2.3 统计分析 | 第51-52页 |
| 3. 实验结果 | 第52-54页 |
| 3.1 SAMC对肿瘤细胞生长的抑制作用 | 第52-53页 |
| 3.2 SAMC对肿瘤生长的抑制作用 | 第53-54页 |
| 4. 讨论和结论 | 第54-56页 |
| 第二章 SAMC对人胃癌SGC-7901抗肿瘤作用及机制研究 | 第56-78页 |
| 1. 实验材料 | 第56-58页 |
| 1.1 药品和试剂 | 第56-57页 |
| 1.2 细胞和动物 | 第57-58页 |
| 1.3 仪器设备 | 第58页 |
| 2. 实验方法 | 第58-65页 |
| 2.1 细胞生长抑制试验 | 第58-59页 |
| 2.2 细胞周期检测 | 第59页 |
| 2.3 DAPI染色 | 第59页 |
| 2.4 细胞凋亡检测 | 第59-60页 |
| 2.5 肿瘤生长抑制试验 | 第60页 |
| 2.6 HE(苏木素-伊红)染色 | 第60-61页 |
| 2.7 TUNEL法检测组织细胞凋亡 | 第61页 |
| 2.8 免疫组化法检测Ki67蛋白表达 | 第61-62页 |
| 2.9 Western blot法检测细胞中和瘤组织中相关蛋白的表达 | 第62-64页 |
| 2.10 统计分析 | 第64-65页 |
| 3. 实验结果 | 第65-75页 |
| 3.1 SAMC抑制胃癌SGC7901细胞增殖 | 第65页 |
| 3.2 SAMC对胃癌SGC7901细胞周期的影响 | 第65-67页 |
| 3.3 SAMC诱导胃癌SGC7901细胞凋亡 | 第67-68页 |
| 3.4 SAMC抑制胃癌SGC7901裸鼠移植瘤的生长 | 第68-69页 |
| 3.5 SAMC对胃癌SGC7901裸鼠移植瘤增殖和凋亡的影响 | 第69-71页 |
| 3.6 SAMC在裸鼠体内的毒性研究 | 第71-74页 |
| 3.7 SAMC调节肿瘤细胞和肿瘤组织中的MAPK和PI3K/Akt信号通路 | 第74-75页 |
| 4. 讨论和结论 | 第75-78页 |
| 第三章 SAMC对人结肠癌HCT116抗肿瘤作用及机制研究 | 第78-95页 |
| 1. 实验材料 | 第78-80页 |
| 1.1 药品和试剂 | 第78-79页 |
| 1.2 细胞和动物 | 第79-80页 |
| 1.3 仪器设备 | 第80页 |
| 2. 实验方法 | 第80-82页 |
| 2.1 细胞内ROS水平检测 | 第80-81页 |
| 2.2 细胞活力测定 | 第81页 |
| 2.3 细胞周期检测 | 第81页 |
| 2.4 DAPI染色 | 第81页 |
| 2.5 细胞凋亡检测 | 第81页 |
| 2.6 肿瘤生长抑制试验 | 第81-82页 |
| 2.7 HE(苏木素-伊红)染色 | 第82页 |
| 2.8 TUNEL法检测组织细胞凋亡 | 第82页 |
| 2.9 免疫组化法检测Ki67蛋白表达 | 第82页 |
| 2.10 Western blot法检测细胞中和瘤组织中相关蛋白的表达 | 第82页 |
| 2.11 统计分析 | 第82页 |
| 3. 实验结果 | 第82-92页 |
| 3.1 SAMC对结肠癌HCT116细胞ROS水平的影响 | 第82-83页 |
| 3.2 SAMC通过上调ROS抑制细胞增殖、阻滞细胞周期 | 第83-85页 |
| 3.3 SAMC通过上调ROS诱导肿瘤细胞发生凋亡 | 第85-86页 |
| 3.4 SAMC通过上调ROS介导p38和JNK通路 | 第86-87页 |
| 3.5 SAMC抑制结肠癌HCT116裸鼠移植瘤的生长 | 第87-88页 |
| 3.6 SAMC对结肠癌HCT116裸鼠移植瘤增殖和凋亡的影响 | 第88-89页 |
| 3.7 SAMC在裸鼠体内的毒性研究 | 第89-92页 |
| 3.8 SAMC调节肿瘤组织中的MAPK和PI3K/Akt信号通路 | 第92页 |
| 4. 讨论和结论 | 第92-95页 |
| 附图 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-103页 |
| 第二部分 SAMC联合顺铂对胃癌移植瘤生长的作用及血清代谢组学研究 | 第103-158页 |
| 前言 | 第103-105页 |
| 第四章 SAMC联合顺铂对胃癌移植瘤生长的作用 | 第105-113页 |
| 1. 实验材料 | 第105-106页 |
| 1.1 药品和试剂 | 第105页 |
| 1.2 细胞和动物 | 第105-106页 |
| 1.3 仪器设备 | 第106页 |
| 2. 实验方法 | 第106-107页 |
| 2.1 裸鼠肿瘤生长抑制试验 | 第106-107页 |
| 2.2 HE(苏木素-伊红)染色 | 第107页 |
| 2.3 统计分析 | 第107页 |
| 3. 实验结果 | 第107-112页 |
| 3.1 SAMC联合顺铂对SGC7901胃癌的抑制作用 | 第107-108页 |
| 3.2 SAMC联合顺铂对体重变化的影响 | 第108-109页 |
| 3.3 SAMC联合顺铂对肝脏、肾脏、脾脏指数变化的影响 | 第109-110页 |
| 3.4 SAMC联合顺铂对血清生化因子的影响 | 第110-111页 |
| 3.5 SAMC联合顺铂对肝脏和肾脏组织形态学的影响 | 第111-112页 |
| 4. 讨论和结论 | 第112-113页 |
| 第五章 基于气质联用的胃癌血清代谢组学研究 | 第113-129页 |
| 第一节 基于气质联用技术研究SGC7901移植瘤对小鼠血清代谢组学的影响 | 第113-122页 |
| 1. 实验材料 | 第113-114页 |
| 1.1 试剂 | 第113页 |
| 1.2 仪器设备 | 第113-114页 |
| 2. 实验方法 | 第114-115页 |
| 2.1 样品采集 | 第114页 |
| 2.2 溶液配制 | 第114页 |
| 2.3 样品预处理 | 第114页 |
| 2.4 方法学验证 | 第114-115页 |
| 2.4.1 专属性 | 第114页 |
| 2.4.2 精密度 | 第114页 |
| 2.4.3 重复性 | 第114-115页 |
| 2.4.4 稳定性 | 第115页 |
| 2.5 GC-MS分析条件 | 第115页 |
| 2.6 数据分析 | 第115页 |
| 3. 实验结果 | 第115-119页 |
| 3.1 方法学验证 | 第115-118页 |
| 3.1.1 方法的专属性 | 第115-117页 |
| 3.1.2 精密度和重复性 | 第117页 |
| 3.1.3 稳定性 | 第117-118页 |
| 3.2 血清代谢组学实验结果 | 第118-119页 |
| 4. 讨论和结论 | 第119-122页 |
| 第二节 基于气质联用技术研究SAMC联合顺铂对荷瘤小鼠血清代谢组学的影响 | 第122-129页 |
| 1. 实验材料 | 第122页 |
| 1.1 试剂 | 第122页 |
| 1.2 仪器设备 | 第122页 |
| 2. 实验方法 | 第122-123页 |
| 2.1 样品采集 | 第122-123页 |
| 2.2 溶液配制 | 第123页 |
| 2.3 样品预处理 | 第123页 |
| 2.4 GC-MS分析条件 | 第123页 |
| 2.5 数据分析 | 第123页 |
| 3. 实验结果 | 第123-127页 |
| 3.1 血清代谢组学实验结果 | 第123-127页 |
| 4. 讨论和结论 | 第127-129页 |
| 第六章 基于液质联用的胃癌血清代谢组学研究 | 第129-149页 |
| 第一节 基于液质联用技术研究SGC7901移植瘤对小鼠血清代谢组学的影响 | 第129-142页 |
| 1. 实验材料 | 第129-130页 |
| 1.1 试剂 | 第129页 |
| 1.2 仪器设备 | 第129-130页 |
| 2. 实验方法 | 第130-133页 |
| 2.1 样品采集 | 第130页 |
| 2.2 溶液配制 | 第130页 |
| 2.3 样品预处理 | 第130-131页 |
| 2.4 方法学验证 | 第131页 |
| 2.4.1 专属性 | 第131页 |
| 2.4.2 线性范围 | 第131页 |
| 2.4.3 精密度和准确度 | 第131页 |
| 2.4.4 稳定性 | 第131页 |
| 2.4.5 回收率 | 第131页 |
| 2.5 UPLC-MS/MS分析条件 | 第131-133页 |
| 2.6 数据分析 | 第133页 |
| 3. 实验结果 | 第133-140页 |
| 3.1 方法学验证 | 第133-138页 |
| 3.1.1 方法的专属性 | 第133-134页 |
| 3.1.2 标准曲线和线性范围 | 第134-135页 |
| 3.1.3 准确度、精密度和回收率 | 第135-136页 |
| 3.1.4 稳定性 | 第136-138页 |
| 3.2 血清代谢组学实验结果 | 第138-140页 |
| 4. 讨论和结论 | 第140-142页 |
| 第二节 基于液质联用技术研究SAMC联合顺铂对荷瘤小鼠血清代谢组学的影响 | 第142-149页 |
| 1. 实验材料 | 第142页 |
| 1.1 试剂 | 第142页 |
| 1.2 仪器设备 | 第142页 |
| 2. 实验方法 | 第142-143页 |
| 2.1 样品采集 | 第142页 |
| 2.2 溶液配制 | 第142-143页 |
| 2.3 样品预处理 | 第143页 |
| 2.4 UPLC-MS/MS分析条件 | 第143页 |
| 2.5 数据分析 | 第143页 |
| 3. 实验结果 | 第143-147页 |
| 3.1 血清代谢组学实验结果 | 第143-147页 |
| 4. 讨论和结论 | 第147-149页 |
| 附图 | 第149-153页 |
| 参考文献 | 第153-158页 |
| 第三部分 SAMC对顺铂肾毒性的保护作用的研究 | 第158-182页 |
| 前言 | 第158-159页 |
| 第七章 SAMC对顺铂肾毒性的保护作用的研究 | 第159-176页 |
| 1. 实验材料 | 第159-161页 |
| 1.1 药品和试剂 | 第159-160页 |
| 1.2 细胞和动物 | 第160页 |
| 1.3 仪器设备 | 第160-161页 |
| 2. 实验方法 | 第161-164页 |
| 2.1 细胞活力测定 | 第161页 |
| 2.2 DAPI染色 | 第161页 |
| 2.3 细胞周期检测 | 第161页 |
| 2.4 大鼠肾损伤模型的建立 | 第161-162页 |
| 2.5 肾功能评价指标检测 | 第162页 |
| 2.6 肾组织中氧化应激因子和抗氧化酶活性的测定 | 第162页 |
| 2.7 肾组织中TNF-α和IL-1β含量的测定 | 第162页 |
| 2.8 TUNEL法检测大鼠肾组织细胞凋亡 | 第162页 |
| 2.9 HE(苏木素-伊红)染色 | 第162页 |
| 2.10 免疫组化法检测肾组织中NF-κB蛋白表达 | 第162-163页 |
| 2.11 Western blot法检测细胞中和肾组织中相关蛋白的表达 | 第163页 |
| 2.12 统计分析 | 第163-164页 |
| 3. 实验结果 | 第164-173页 |
| 3.1 SAMC预处理对HK-2细胞活力的影响 | 第164-165页 |
| 3.2 SAMC抑制顺铂诱导的HK-2细胞凋亡 | 第165-167页 |
| 3.3 SAMC对顺铂诱导的大鼠肾损伤指标的影响 | 第167-169页 |
| 3.4 SAMC对大鼠肾组织病理学和凋亡的影响 | 第169-170页 |
| 3.5 SAMC对顺铂诱导肾损伤大鼠的氧化应激指标和抗氧化酶的影响 | 第170-171页 |
| 3.6 SAMC抑制顺铂诱导的肾损伤大鼠的炎症反应 | 第171-173页 |
| 4. 讨论和结论 | 第173-176页 |
| 附图 | 第176-178页 |
| 参考文献 | 第178-182页 |
| 全文总结 | 第182-184页 |
| 致谢 | 第184-185页 |
| 攻读学位期间发表论文目录 | 第185-186页 |
| 附件 | 第186页 |
