| 中文摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第1章 文献综述 | 第10-42页 |
| 1.1 引言 | 第10-11页 |
| 1.2 卟啉的自组装研究进展 | 第11-20页 |
| 1.2.1 卟啉的聚集方式 | 第11-13页 |
| 1.2.2 卟啉自组装的主要驱动力 | 第13-15页 |
| 1.2.2.1 卟啉的氢键作用 | 第13页 |
| 1.2.2.2 卟啉的金属配位作用 | 第13-14页 |
| 1.2.2.3 卟啉的静电相互作用 | 第14页 |
| 1.2.2.4 卟啉的疏水作用 | 第14-15页 |
| 1.2.3 卟啉自组装的常用方法 | 第15-16页 |
| 1.2.3.1 溶剂混合法自组装 | 第15页 |
| 1.2.3.2 表面活性剂辅助自组装 | 第15-16页 |
| 1.2.3.3 物理和化学气相沉积法 | 第16页 |
| 1.2.4 卟啉自组装的应用 | 第16-20页 |
| 1.2.4.1 模拟光合作用 | 第16-17页 |
| 1.2.4.2 光电器件 | 第17-18页 |
| 1.2.4.3 生物医学 | 第18-20页 |
| 1.2.4.4 光催化 | 第20页 |
| 1.3 多肽的自组装概述 | 第20-22页 |
| 1.3.1 多肽的二级结构 | 第20-21页 |
| 1.3.2 多肽自组装的应用 | 第21-22页 |
| 1.4 卟啉-多肽自组装体系的研究进展 | 第22-39页 |
| 1.4.1 卟啉-多肽自组装体系的结构设计 | 第22-34页 |
| 1.4.1.1 卟啉-多肽非共价结合 | 第22-28页 |
| 1.4.1.2 卟啉-多肽共价结合 | 第28-34页 |
| 1.4.2 卟啉-多肽超分子体系的应用研究进展 | 第34-39页 |
| 1.4.2.1 模拟光合作用 | 第34-36页 |
| 1.4.2.2 生物医学 | 第36-38页 |
| 1.4.2.3 光催化 | 第38-39页 |
| 1.5 论文的研究意义、设计思路和研究内容 | 第39-42页 |
| 第2章 卟啉-苯丙氨酸二肽的自组装及光物理性能研究 | 第42-70页 |
| 2.1 概述 | 第42页 |
| 2.2 实验部分 | 第42-50页 |
| 2.2.1 仪器与试剂 | 第42-44页 |
| 2.2.2 合成实验部分 | 第44-48页 |
| 2.2.2.1 苯丙氨酸二肽在2-CTC树脂上的固定 | 第44-45页 |
| 2.2.2.2 固相亲核取代反应合成TPPtFFC | 第45-48页 |
| 2.2.3 超分子体系的制备及表征 | 第48-50页 |
| 2.2.3.1 超分子体系的制备 | 第48-49页 |
| 2.2.3.2 超分子体系的表征 | 第49-50页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第50-67页 |
| 2.3.1 卟啉-苯丙氨酸二肽衍生物的合成 | 第50-55页 |
| 2.3.1.1 苯丙氨酸二肽的合成 | 第52-53页 |
| 2.3.1.2 TPPtFFC的合成 | 第53-55页 |
| 2.3.2 超分子体系的制备 | 第55页 |
| 2.3.3 组装体形貌的表征 | 第55-57页 |
| 2.3.4 组装体的光物理性能 | 第57-64页 |
| 2.3.4.1 紫外-可见吸收光谱 | 第57-59页 |
| 2.3.4.2 荧光光谱 | 第59-61页 |
| 2.3.4.3 拉曼光谱 | 第61-64页 |
| 2.3.5 组装体内部的分子排列分析 | 第64-67页 |
| 2.4 本章小结 | 第67-70页 |
| 第3章 卟啉-二肽衍生物在水中的自组装及光物理性能研究 | 第70-98页 |
| 3.1 概述 | 第70-71页 |
| 3.2 实验部分 | 第71-77页 |
| 3.2.1 仪器与试剂 | 第71页 |
| 3.2.2 合成实验部分 | 第71-75页 |
| 3.2.2.1 TPP-FFN的合成 | 第71-72页 |
| 3.2.2.2 TPPtFC的合成 | 第72-73页 |
| 3.2.2.3 TPPtFFOMe的合成 | 第73页 |
| 3.2.2.4 ZnTPPtFC的合成 | 第73-74页 |
| 3.2.2.5 TPPtGC的合成 | 第74-75页 |
| 3.2.3 超分子体系的制备及表征 | 第75-77页 |
| 3.2.3.1 超分子体系的制备 | 第75页 |
| 3.2.3.2 超分子体系的表征 | 第75-77页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第77-97页 |
| 3.3.1 合成部分 | 第77-80页 |
| 3.3.1.1 TPP-FFN的合成 | 第77-78页 |
| 3.3.1.2 TPPtFC的合成 | 第78页 |
| 3.3.1.3 TPPtFFOMe的合成 | 第78页 |
| 3.3.1.4 ZnTPPtFC的合成 | 第78-79页 |
| 3.3.1.5 TPPtGC的合成 | 第79-80页 |
| 3.3.2 TPPtFFC在HFIP水溶液中的自组装 | 第80-85页 |
| 3.3.2.1 自组装方案的设计 | 第80-81页 |
| 3.3.2.2 组装体形貌的表征 | 第81-83页 |
| 3.3.2.3 X-射线衍射分析 | 第83-84页 |
| 3.3.2.4 组装体的吸收光谱 | 第84-85页 |
| 3.3.3 TPPtFFC在TMG水溶液中的自组装 | 第85-94页 |
| 3.3.3.1 自组装方案的设计 | 第85-86页 |
| 3.3.3.2 水溶液初始pH<1.0的组装体形貌 | 第86-88页 |
| 3.3.3.3 水溶液初始pH=4.0的组装体形貌 | 第88-89页 |
| 3.3.3.4 水溶液pH=7.0的自组装 | 第89-90页 |
| 3.3.3.5 水溶液pH>10.0的自组装 | 第90-91页 |
| 3.3.3.6 X-射线衍射分析 | 第91-92页 |
| 3.3.3.7 光物理性能 | 第92-94页 |
| 3.3.4 末端官能团离子特性对组装体形貌的影响 | 第94-97页 |
| 3.4 本章小结 | 第97-98页 |
| 第4章 抗肿瘤四肽MV-卟啉衍生物的研究探索 | 第98-116页 |
| 4.1 概述 | 第98页 |
| 4.2 实验部分 | 第98-105页 |
| 4.2.1 试剂及实验仪器 | 第98-99页 |
| 4.2.2 生物试剂的配置 | 第99-100页 |
| 4.2.2.1 PBS水溶液的配置 | 第99-100页 |
| 4.2.2.2 DMEM培养基的配置 | 第100页 |
| 4.2.2.3 DMEM全培养基的配置 | 第100页 |
| 4.2.3 合成实验部分 | 第100-102页 |
| 4.2.3.1 TPP-Gly-Fmoc的合成 | 第100-101页 |
| 4.2.3.2 TPP-Gly的合成 | 第101页 |
| 4.2.3.3 TPP-Gly-MV-Fmoc的合成 | 第101-102页 |
| 4.2.3.4 TPP-Gly-MV | 第102页 |
| 4.2.4 自组装部分 | 第102-103页 |
| 4.2.4.1 超分子体系的制备 | 第102-103页 |
| 4.2.4.2 组装体的表征 | 第103页 |
| 4.2.5 生物活性测试部分 | 第103-105页 |
| 4.2.5.1 细胞的培养 | 第103-104页 |
| 4.2.5.2 TPP-Gly-MV对肿瘤细胞的体外细胞毒性测试 | 第104-105页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第105-114页 |
| 4.3.1 合成部分 | 第105-110页 |
| 4.3.2 抗肿瘤活性测试 | 第110-112页 |
| 4.3.3 自组装部分 | 第112-114页 |
| 4.4 本章小结 | 第114-116页 |
| 第5章 结论与展望 | 第116-118页 |
| 5.1 结论 | 第116页 |
| 5.2 展望 | 第116-118页 |
| 参考文献 | 第118-134页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第134-136页 |
| 附录 | 第136-150页 |
| 致谢 | 第150-151页 |
