首页--工业技术论文--化学工业论文--其他化学工业论文--发酵工业论文--发酵法制有机酸论文

5-氨基乙酰丙酸产生菌的选育及其合成酶基因的克隆与表达

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
第1章 绪论第11-21页
    1.1 本课题研究的背景及意义第11-19页
        1.1.1 ALA 的合成途径第11-15页
        1.1.2 ALA 的应用第15-19页
        1.1.3 ALA 的稳定性第19页
    1.2 国内外研究现状第19-20页
    1.3 本课题的研究内容第20-21页
第2章 ALA 产生菌的筛选及分子生物学鉴定第21-30页
    2.1 实验材料第21页
        2.1.1 实验药品第21页
        2.1.2 实验仪器设备第21页
    2.2 实验方法第21-24页
        2.2.1 ALA 的测定方法[Ehrlich’s 试剂显色法测定ALA]第21-22页
        2.2.2 常用试剂的配制第22页
        2.2.3 样品的测定第22-23页
        2.2.4 ALA 产生菌的富集与分离第23页
        2.2.5 菌株的分子生物学鉴定第23-24页
    2.3 结果与讨论第24-29页
        2.3.1 ALA 产生菌的初筛结果第24-25页
        2.3.2 ALA 高产菌株的复筛第25-27页
        2.3.3 菌株G-污泥Ⅱ初步鉴定第27-29页
    2.4 本章小结第29-30页
第3章 菌株 G-污泥Ⅱ生长特性的研究第30-48页
    3.1 实验材料第30页
        3.1.1 实验药品第30页
        3.1.2 实验仪器设备第30页
    3.2 实验方法第30-32页
        3.2.1 ALA 标准曲线的制作第30页
        3.2.2 培养基中的碳、氮源种类对菌体生长及 ALA 积累的影响第30-31页
        3.2.3 黑暗好氧、光照厌氧培养对菌体生长及 ALA 积累的影响第31页
        3.2.4 接种量对菌体生长及 ALA 积累的影响第31页
        3.2.5 摇瓶装液量对菌体生长及 ALA 积累的影响第31页
        3.2.6 前体对菌体生长及ALA 积累的影响第31页
        3.2.7 醋酸铅对菌体生长及 ALA 积累的影响第31-32页
    3.3 结果与讨论第32-47页
        3.3.1 ALA 标准曲线的绘制第32-33页
        3.3.2 碳源对菌体生长及ALA 积累的影响第33页
        3.3.3 不同氮源对菌体生长及ALA 积累的影响第33-35页
        3.3.4 黑暗好氧、光照厌氧培养对菌体生长及 ALA 积累的影响第35-36页
        3.3.5 接种量的选择第36-37页
        3.3.6 不同装液量的选择第37-38页
        3.3.7 前体对菌体生长及ALA 积累的影响第38-43页
        3.3.8 醋酸铅对菌体生长及 ALA 积累的影响第43-44页
        3.3.9 最佳发酵条件下的菌体生长及 ALA 合成情况第44-47页
    3.4 本章小结第47-48页
第4章 菌种 G-污泥Ⅱ的诱变育种第48-54页
    4.1 实验材料第48页
        4.1.1 实验药品第48页
        4.1.2 实验仪器设备第48页
    4.2 实验方法第48-49页
        4.2.1 实验流程第48页
        4.2.2 氯化锂、紫外协同诱变方法第48-49页
        4.2.3 微培养方法第49页
        4.2.4 摇瓶培养第49页
    4.3 结果与讨论第49-52页
        4.3.1 第一批诱变结果第49-50页
        4.3.2 第二批诱变结果第50-51页
        4.3.3 第三批诱变结果第51-52页
        4.3.4 三次诱变结果比较第52页
    4.4 本章小结第52-54页
第5章 ALA 合成酶基因(HEMA)的克隆与表达第54-71页
    5.1 试验材料第54-55页
        5.1.1 实验药品第54-55页
        5.1.2 实验仪器设备第55页
    5.2 实验方法第55-64页
        5.2.1 光合细菌G-污泥Ⅱ基因组的提取第55页
        5.2.2 引物设计与hem A 目的基因的扩增第55-57页
        5.2.3 琼脂糖凝胶电泳第57页
        5.2.4 DNA 的纯化回收第57-58页
        5.2.5 克隆载体hemA-PEASY-T1 的构建及测序第58-60页
        5.2.6 原核表达载体PET30a-hemA 的构建第60-62页
        5.2.7 重组hemA 基因在E.coli 中的诱导表达第62-63页
        5.2.8 SDS-PAGE 电泳第63页
        5.2.9 粗酶液制备第63-64页
    5.3 结果与讨论第64-70页
        5.3.1 hemA 目的基因的获得第64-65页
        5.3.2 TA 克隆及克隆载体hemA-PEASY-T1 的验证和测序结果第65-69页
        5.3.3 表达载体PET30a-hemA 的构建及酶切验证第69页
        5.3.4 SDS-PAGE 分析第69-70页
    5.4 本章小结第70-71页
结论第71-73页
参考文献第73-77页
致谢第77页

论文共77页,点击 下载论文
上一篇:低渗透油藏水平井产能与井网优化研究
下一篇:不同分子量聚-γ-谷氨酸盐的制备及其添加对酸奶和面团品质的影响