| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一章 文献综述 | 第8-19页 |
| 1.1 引言 | 第8页 |
| 1.2 生物体内重要的抗氧化酶 | 第8-11页 |
| 1.2.1 超氧化物歧化酶的研究进展 | 第8-10页 |
| 1.2.2 过氧化氢酶和过氧化物酶的研究进展 | 第10页 |
| 1.2.3 谷胱甘肽过氧化物酶的研究进展 | 第10-11页 |
| 1.3 SOD 在医学上的应用 | 第11-15页 |
| 1.3.1 SOD 的抗辐射作用 | 第11-12页 |
| 1.3.2 SOD 与糖尿病的慢性并发症 | 第12-13页 |
| 1.3.3 SOD 与肺病 | 第13页 |
| 1.3.4 SOD 的抗炎作用 | 第13页 |
| 1.3.5 SOD 在缺血再灌流损伤中的作用 | 第13-14页 |
| 1.3.6 SOD 在心血管疾病中的作用 | 第14页 |
| 1.3.7 SOD 在脑组织中的调控作用 | 第14页 |
| 1.3.8 SOD 对肿瘤的作用 | 第14-15页 |
| 1.4 SOD 在工业上的应用 | 第15-16页 |
| 1.4.1 SOD 在食品工业上的应用 | 第15页 |
| 1.4.2 SOD 在日化工业上的应用 | 第15-16页 |
| 1.5 SOD 在农业上的应用 | 第16页 |
| 1.6 从南瓜属植物中提取 RNA | 第16页 |
| 1.7 RT-PCR | 第16-18页 |
| 1.7.1 cDNA 的合成方法 | 第16-17页 |
| 1.7.2 简并引物的设计方法 | 第17页 |
| 1.7.3 PCR 方法的介绍 | 第17-18页 |
| 1.8 测序 | 第18-19页 |
| 第二章 材料和方法 | 第19-29页 |
| 2.1 试验材料 | 第19页 |
| 2.2 主要试剂及仪器 | 第19-20页 |
| 2.3 RNA 提取及鉴定 | 第20-24页 |
| 2.3.1 RNase 的去除 | 第20-21页 |
| 2.3.2 RNA 的提取 | 第21-23页 |
| 2.3.3 RNA 完整性的检测 | 第23-24页 |
| 2.3.4 RNA 浓度和纯度的检测 | 第24页 |
| 2.4 cDNA 的合成 | 第24页 |
| 2.5 目的基因的合成 | 第24-27页 |
| 2.5.1 引物设计原则 | 第24-25页 |
| 2.5.2 简并引物的设计 | 第25-26页 |
| 2.5.3 PCR 的条件 | 第26-27页 |
| 2.6 凝胶 DNA 回收 | 第27页 |
| 2.7 序列验证 | 第27-29页 |
| 2.7.1 T-vector 的模式图 | 第27-28页 |
| 2.7.2 T/A 克隆 | 第28页 |
| 2.7.3 测序 | 第28-29页 |
| 第三章 结果与分析 | 第29-42页 |
| 3.1 南瓜属植物总 RNA 提取方法的建立 | 第29-36页 |
| 3.1.1 RNA 提取方法研究 | 第29-35页 |
| 3.1.2 RNA 提取方法的确定 | 第35-36页 |
| 3.2 RNA 的浓度与纯度 | 第36页 |
| 3.3 目的基因的分离 | 第36-40页 |
| 3.3.1 简并引物的设计 | 第36页 |
| 3.3.2 PCR 条件的研究 | 第36-40页 |
| 3.4 测序结果 | 第40-42页 |
| 3.4.1 西葫芦叶子中的 Cu/Zn-SOD 基因 | 第40-41页 |
| 3.4.2 西葫芦果肉中的 Cu/Zn-SOD 基因 | 第41页 |
| 3.4.3 南瓜叶子中的 Cu/Zn-SOD 基因 | 第41页 |
| 3.4.4 南瓜果肉中的 Cu/Zn-SOD 基因 | 第41-42页 |
| 第四章 讨论 | 第42-44页 |
| 4.1 南瓜属植物总 RNA 提取 | 第42页 |
| 4.2 防止 RNA 的降解与损失 | 第42-43页 |
| 4.3 PCR 的方法 | 第43-44页 |
| 第五章 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-50页 |
| 硕士期间发表论文情况 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51页 |
