| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 英文缩略词 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-26页 |
| 一、肿瘤与血管生成 | 第11-16页 |
| 1、血管生成与肿瘤生长、转移的关系 | 第11-12页 |
| 2、肿瘤新生血管生成抑制剂研究进展 | 第12-16页 |
| 二、斑马鱼作为模式生物的优势及研究进展 | 第16-21页 |
| 1、斑马鱼是理想的研究人类疾病的模式生物 | 第16-18页 |
| 2、斑马鱼作为抗血管生成药物筛选模型的研究进展 | 第18-21页 |
| 三、抗肿瘤抗生素力达霉素的研究进展 | 第21-26页 |
| 第二章 LDM 对斑马鱼胚胎形态发育的影响 | 第26-31页 |
| 一、实验材料 | 第26-27页 |
| 1、受试化合物 | 第26页 |
| 2、实验动物 | 第26页 |
| 3、实验试剂 | 第26页 |
| 4、实验仪器 | 第26-27页 |
| 二、实验方法 | 第27-28页 |
| 1、相关溶液的配制 | 第27页 |
| 2、斑马鱼胚胎的获得 | 第27-28页 |
| 3、药物处理 | 第28页 |
| 4、LDM 对斑马鱼胚胎形态发育影响的观察 | 第28页 |
| 三、实验结果 | 第28-30页 |
| 1、斑马鱼胚胎发育抑制与LDM 浓度的关系 | 第28-29页 |
| 2、LDM 对斑马鱼胚胎形态发育的影响 | 第29-30页 |
| 四、讨论 | 第30-31页 |
| 第三章 LDM 抑制斑马鱼胚胎血管生成 | 第31-39页 |
| 一、实验材料 | 第31页 |
| 1、实验试剂 | 第31页 |
| 2、实验仪器 | 第31页 |
| 二、实验方法 | 第31-34页 |
| 1、斑马鱼胚胎药物处理 | 第31-32页 |
| 2、血管生成定量检测 | 第32页 |
| 3、血管染色 | 第32-34页 |
| 4、利用flk1-GFP 转基因斑马鱼观察血管生成情况 | 第34页 |
| 三、实验结果 | 第34-38页 |
| 1、LDM 对斑马鱼胚胎血管生成影响的定量碱性磷酸酶检测 | 第34-35页 |
| 2、LDM 对斑马鱼血管生成影响的NBT/BCIP 血管染色检测 | 第35-37页 |
| 3、LDM 对flk1-GFP 转基因斑马鱼胚胎血管生成的影响 | 第37-38页 |
| 四、讨论 | 第38-39页 |
| 第四章 LDM 对斑马鱼胚胎VEGF 基因表达的影响 | 第39-52页 |
| 一、实验材料 | 第39-40页 |
| 1、实验试剂 | 第39-40页 |
| 2、实验仪器 | 第40页 |
| 二、实验方法 | 第40-48页 |
| 1、RT-PCR 检测 | 第40-42页 |
| 2、实时荧光定量PCR 检测 | 第42-43页 |
| 3、蛋白免疫印迹检测 | 第43-48页 |
| 三、实验结果 | 第48-51页 |
| 1、LDM 对VEGF m RNA 表达水平的影响 | 第48-49页 |
| 2、LDM 对VEGF 蛋白表达水平的影响 | 第49-51页 |
| 四、讨论 | 第51-52页 |
| 第五章 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-60页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
