| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 中英文缩略词 | 第8-13页 |
| 第1章 文献综述 | 第13-20页 |
| 1.1 植物中 14-3-3 蛋白研究现状 | 第13-18页 |
| 1.1.1 14-3-3 蛋白的发现 | 第13页 |
| 1.1.2 14-3-3 蛋白的结构与功能 | 第13-18页 |
| 1.2 本研究的目的与意义 | 第18-20页 |
| 第2章 普通菜豆 14-3-3 蛋白基因家族的生物信息学分析 | 第20-26页 |
| 2.1 材料与方法 | 第20-21页 |
| 2.2 结果 | 第21-24页 |
| 2.3 讨论 | 第24-25页 |
| 2.4 小结 | 第25-26页 |
| 第3章 普通菜豆 14-3-3 蛋白基因在不同组织中的表达及在干旱胁迫下的表达模式分析 | 第26-35页 |
| 3.1 材料 | 第26-27页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第26页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第26页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第26页 |
| 3.1.4 实时定量PCR引物 | 第26-27页 |
| 3.2 方法 | 第27-30页 |
| 3.3 结果 | 第30-34页 |
| 3.3.1 普通菜豆 14-3-3 蛋白基因家族在不同组织中的表达分析 | 第30-31页 |
| 3.3.2 普通菜豆 14-3-3 蛋白基因在干旱胁迫下的表达模式分析 | 第31-34页 |
| 3.4 讨论 | 第34页 |
| 3.5 小结 | 第34-35页 |
| 第4章 PvGF14a基因的启动子克隆及表达分析 | 第35-49页 |
| 4.1 材料 | 第35-37页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第35页 |
| 4.1.2 菌株及载体 | 第35-36页 |
| 4.1.3 工具酶及生化试剂 | 第36页 |
| 4.1.4 主要仪器设备 | 第36页 |
| 4.1.5 引物合成及测序 | 第36-37页 |
| 4.2 方法 | 第37-43页 |
| 4.2.1 普通菜豆DNA的提取与启动子的克隆 | 第37-39页 |
| 4.2.2 PvGF14a启动子区域驱动的gus表达载体的构建 | 第39-42页 |
| 4.2.3 拟南芥的遗传转化 | 第42-43页 |
| 4.2.4 启动子融合gus报告基因的转基因植株的筛选 | 第43页 |
| 4.2.5 GUS染色 | 第43页 |
| 4.3 结果 | 第43-47页 |
| 4.3.1 PvGF14a启动子区域的克隆及序列分析 | 第43-45页 |
| 4.3.2 PvGF14a启动子区域驱动的gus表达载体的构建 | 第45-46页 |
| 4.3.3 转PvGF14apro::gus拟南芥植株的筛选与鉴定 | 第46页 |
| 4.3.4 转PvGF14apro::gus拟南芥GUS染色分析 | 第46-47页 |
| 4.4 讨论 | 第47页 |
| 4.5 小结 | 第47-49页 |
| 第5章 PvGF14a基因的异源过表达分析 | 第49-62页 |
| 5.1 材料 | 第49-50页 |
| 5.1.1 植物材料 | 第49页 |
| 5.1.2 菌株及载体 | 第49-50页 |
| 5.1.3 工具酶及生化试剂 | 第50页 |
| 5.1.4 主要仪器设备 | 第50页 |
| 5.1.5 引物合成及测序 | 第50页 |
| 5.2 方法 | 第50-53页 |
| 5.2.1 拟南芥或番茄的遗传转化 | 第50-51页 |
| 5.2.2 PvGF14a转基因植株的筛选及鉴定 | 第51-52页 |
| 5.2.3 PvGF14a过表达植株抗旱性分析 | 第52-53页 |
| 5.3 结果 | 第53-60页 |
| 5.3.1 转PvGF14a基因拟南芥植株的筛选与鉴定 | 第53-54页 |
| 5.3.2 转PvGF14a基因番茄的筛选及鉴定 | 第54-55页 |
| 5.3.3 PvGF14a转基因拟南芥和番茄植株的抗旱性初步分析 | 第55-60页 |
| 5.4 讨论 | 第60-61页 |
| 5.5 小结 | 第61-62页 |
| 第6章 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-70页 |
| 作者简介 | 第70-71页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
