| 摘要 | 第9-10页 |
| ABSTRACT | 第10页 |
| 第一章 绪论 | 第11-25页 |
| 1.1 昆虫的嗅觉系统和嗅觉受体蛋白质 | 第11-13页 |
| 1.2 嗅觉受体蛋白的异源表达 | 第13页 |
| 1.3 无细胞蛋白质合成系统 | 第13-15页 |
| 1.4 无细胞蛋白质合成体系表达膜蛋白 | 第15-22页 |
| 1.5 无细胞蛋白质合成体系表达嗅觉受体蛋白 | 第22-23页 |
| 1.6 本论文研究内容 | 第23-25页 |
| 1.6.1 研究对象 | 第23页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第23-25页 |
| 第二章 线性表达模板制备 | 第25-30页 |
| 2.1 Or83b线性模板制备 | 第25-28页 |
| 2.2 Or7a和Or42a线性模板制备 | 第28-29页 |
| 2.3 本章小结 | 第29-30页 |
| 第三章 质粒表达模板制备 | 第30-43页 |
| 3.1 PCR扩增 | 第30-33页 |
| 3.1.1 引物设计方法 | 第30页 |
| 3.1.2 Or83b引物设计 | 第30-32页 |
| 3.1.3 PCR扩增体系 | 第32-33页 |
| 3.2 质粒选择 | 第33-34页 |
| 3.3 双酶切 | 第34-35页 |
| 3.3.1 PCR产物双酶切 | 第34-35页 |
| 3.3.2 pIVEX2.3 和p IVEX2.4 双酶切 | 第35页 |
| 3.4 基因与载体连接成为重组质粒 | 第35-36页 |
| 3.5 重组质粒转化后的菌体PCR | 第36-39页 |
| 3.5.1 Or83b-p IVEX2.3、Or83b- p IVEX2.4 转化后的菌体PCR | 第36-37页 |
| 3.5.2 Or7a-p IVEX2.3、Or7a- p IVEX2.4 转化后的菌体PCR | 第37-38页 |
| 3.5.3 Or42a-p IVEX2.3 转化后的菌体PCR | 第38-39页 |
| 3.6 小量提取质粒 | 第39-40页 |
| 3.7 大量质粒提取 | 第40-42页 |
| 3.7.1 质粒Or83b-p IVEX2.3 和质粒Or83b-pIVEX2.4 大量提取 | 第40-41页 |
| 3.7.2 质粒Or7a-pIVEX2.3、质粒Or7a-pIVEX2.4 和质粒Or42a-p IVEX2.3大量提取 | 第41-42页 |
| 3.8 质粒测序检测 | 第42页 |
| 3.9 本章小结 | 第42-43页 |
| 第四章 果蝇嗅觉受体蛋白Or83b、Or7a、Or42a的表达 | 第43-53页 |
| 4.1 无细胞蛋白质合成体系表达 | 第43-44页 |
| 4.2 大肠杆菌提取物制备 | 第44-48页 |
| 4.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE） | 第48-50页 |
| 4.4 WESTERN BLOT | 第50-53页 |
| 第五章 果蝇嗅觉受体蛋白Or83b、Or7a、Or42a的可溶性表达 | 第53-62页 |
| 5.1 去污剂简介 | 第53-55页 |
| 5.1.1 去污剂工作原理 | 第53页 |
| 5.1.2 去污剂分类 | 第53-54页 |
| 5.1.3 常见去污剂性质 | 第54页 |
| 5.1.4 嗅觉受体可溶性表达 | 第54-55页 |
| 5.2 Or83b-p IVEX2.4 的可溶性表达 | 第55-57页 |
| 5.3 Or7a-p IVEX2.4 的可溶性表达 | 第57-59页 |
| 5.4 Or42a-p IVEX2.3 的可溶性表达 | 第59-61页 |
| 5.5 本章小结 | 第61-62页 |
| 第六章 总结与展望 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-67页 |
| 作者在学期间取得的学术成果 | 第67-68页 |
| 附录1 引物 | 第68-70页 |
| 附录2 Or42a的CDS序列 | 第70-72页 |
| 附录3 重组质粒测序 | 第72-76页 |
