| 摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第12-24页 |
| 1.1 试验研究的目的与意义 | 第12页 |
| 1.2 维生素C的研究进展 | 第12-16页 |
| 1.2.1 维生素C的遗传研究进展 | 第12-13页 |
| 1.2.2 维生素C的生物合成途径 | 第13-14页 |
| 1.2.3 维生素C合成途径的几个关键酶 | 第14页 |
| 1.2.4 维生素C代谢及相关基因 | 第14-15页 |
| 1.2.5 维生素C含量的几种主要测定方法 | 第15页 |
| 1.2.6 维生素C含量的的QTL | 第15-16页 |
| 1.3 分子标记在辣椒上的应用的研究进展 | 第16-22页 |
| 1.3.1 分子标记简介 | 第16-18页 |
| 1.3.2 遗传多样性及亲缘关系的研究 | 第18页 |
| 1.3.3 辣椒分子遗传图谱的构建 | 第18-19页 |
| 1.3.4 目的基因定位 | 第19-22页 |
| 1.4 研究内容 | 第22-23页 |
| 1.5 技术路线 | 第23-24页 |
| 2 材料与方法 | 第24-34页 |
| 2.1 实验材料及试剂 | 第24页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第24页 |
| 2.1.2 试验所用主要试剂 | 第24页 |
| 2.1.3 主要仪器和设备 | 第24页 |
| 2.2 试验方法 | 第24-25页 |
| 2.2.1 性状测定方法 | 第24-25页 |
| 2.2.2 田间数据的分析方法 | 第25页 |
| 2.3 分子标记试验设计和方法 | 第25-34页 |
| 2.3.1 辣椒基因DNA的提取 | 第25-26页 |
| 2.3.2 SSR标记 | 第26-28页 |
| 2.3.3 AFLP分子标记 | 第28-32页 |
| 2.3.4 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第32页 |
| 2.3.5 辣椒果实Vc含量的遗传模型的确立 | 第32页 |
| 2.3.6 遗传连锁图谱的构建 | 第32-33页 |
| 2.3.7 辣椒果实维生素 C 含量相关的 QTL 定位 | 第33-34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-48页 |
| 3.1 6个世代辣椒果实Vc含量及果实相关性状的表现 | 第34页 |
| 3.2 F_2群体正态分布检测 | 第34-35页 |
| 3.3 F_2辣椒果实Vc含量及果实相关性状的相关性分析 | 第35-36页 |
| 3.4 辣椒果实维生素C含量的遗传模型的确立 | 第36-38页 |
| 3.4.1 遗传模型的选择 | 第36页 |
| 3.4.2 模型适合性检验 | 第36-38页 |
| 3.5 辣椒基因组DNA的提取结果 | 第38-39页 |
| 3.6 AFLP分子标记 | 第39-42页 |
| 3.6.1 AFLP酶切连接图片 | 第39-40页 |
| 3.6.2 AFLP预扩增图片 | 第40页 |
| 3.6.3 AFLP选择性扩增 | 第40页 |
| 3.6.4 AFLP分子标记引物筛选 | 第40-41页 |
| 3.6.5 AFLP分子标记在F2群体的扩增 | 第41-42页 |
| 3.7 SSR分子标记 | 第42-43页 |
| 3.7.1 SSR分子标记引物在亲本间的筛选 | 第42-43页 |
| 3.7.2 SSR分子标记引物在F2群体的扩增 | 第43页 |
| 3.8 遗传图谱的构建 | 第43-45页 |
| 3.9 辣椒果实维生素含量的QTL | 第45-46页 |
| 3.10 辣椒高维生素C含量种质资源的筛选 | 第46-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 4.1 辣椒果实维生素C含量的相关性 | 第48页 |
| 4.2 维生素C含量的测定方法 | 第48页 |
| 4.3 辣椒果实维生素C含量遗传模型 | 第48-49页 |
| 4.4 辣椒果实维生素含量QTL分析 | 第49-50页 |
| 5 结论 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-63页 |
| 附录 | 第63-76页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第76页 |
