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短链酰基辅酶A脱氢酶在心肌纤维化中的作用

中文摘要第9-12页
Abstract第12-14页
第一章 引言第15-19页
    1.1 心肌纤维化第15-16页
    1.2 心脏能量代谢第16-17页
        1.2.1 心脏脂肪酸代谢第16页
        1.2.2 PPARa与心脏能量代谢第16-17页
    1.3 SCAD在心血管疾病中的研究现状第17-18页
    1.4 结语第18页
    1.5 研究思路第18-19页
第二章 心肌纤维化动物模型中SCAD的表达变化以及游泳运动对SCAD表达的影响第19-40页
    2.1 前言第19页
    2.2 实验材料第19-21页
        2.2.1 实验动物第19页
        2.2.2 主要药物与试剂第19-20页
        2.2.3 主要实验仪器和器材第20-21页
        2.2.4 主要试剂配置第21页
    2.3 实验方法第21-33页
        2.3.1 游泳耐力训练第21页
        2.3.2 超声心动图第21-22页
        2.3.3 大鼠收缩压及左室重量指数的测定第22页
        2.3.4 心肌组织总RNA提取和Real-time PCR第22-25页
        2.3.5 心肌组织总蛋白提取和Western blot分析第25-27页
        2.3.6 心肌组织SCAD酶活性检测第27-28页
        2.3.7 心肌组织游离脂肪酸含量检测第28-30页
        2.3.8 心肌组织ATP含量的检测第30-31页
        2.3.9 心肌组织羟脯氨酸含量的测定第31页
        2.3.10 心肌组织脂肪酸 β 氧化速率检测第31-33页
        2.3.11 Masson染色分析第33页
        2.3.12 实验分组第33页
        2.3.13 统计学分析第33页
    2.4 实验结果第33-39页
        2.4.1 血压、心率的变化第33-34页
        2.4.2 超声心动图参数变化第34-36页
        2.4.3 心肌组织Masson染色第36-37页
        2.4.4 心肌纤维化模型中SCAD的表达改变以及游泳运动的干预第37-38页
        2.4.5 心肌纤维化模型中脂肪酸氧化水平的变化第38-39页
    2.5 讨论第39-40页
第三章 SCAD在心肌纤维化动物模型体外培养心脏成纤维细胞中的作用以及游泳运动对SCAD表达的影响第40-59页
    3.1 前言第40-41页
    3.2 实验材料第41-43页
        3.2.1 实验动物第41页
        3.2.2 主要药物与试剂第41-42页
        3.2.3 主要试剂配置第42-43页
    3.3 实验方法第43-54页
        3.3.1 心脏成纤维细胞原代培养第43-44页
        3.3.2 心脏成纤维细胞总RNA提取和Real-time PCR第44-46页
        3.3.3 心脏成纤维细胞总蛋白提取和Western blot分析第46-48页
        3.3.4 心脏成纤维细胞SCAD酶活性检测第48-50页
        3.3.5 心脏成纤维细胞游离脂肪酸含量检测第50-52页
        3.3.6 心脏成纤维细胞ATP含量的检测第52-53页
        3.3.7 心脏成纤维细胞羟脯氨酸含量的检测第53-54页
        3.3.8 心脏成纤维细胞脂肪酸 β 氧化速率的检测第54页
        3.3.9 实验分组第54页
        3.3.10 统计学分析第54页
    3.4 结果第54-58页
        3.4.1 心肌纤维化动物模型心脏成纤维细胞中SCAD的表达变化第54-56页
        3.4.2 心肌纤维化动物模型中心脏成纤维细胞能量代谢以及游泳运动的干预第56-58页
    3.5 讨论第58-59页
第四章 SCAD在ANG II诱导的心脏成纤维细胞体外模型中的作用第59-72页
    4.1 前言第59页
    4.2 实验材料第59-61页
        4.2.1 实验动物第59页
        4.2.2 主要药物与试剂第59-60页
        4.2.3 主要实验仪器和器材第60-61页
        4.2.4 主要试剂配置第61页
    4.3 实验方法第61-64页
        4.3.1 心脏成纤维细胞原代培养第61-62页
        4.3.2 心脏成纤维细胞增殖检测第62页
        4.3.3 心脏成纤维细胞总RNA提取和Real-time PCR第62页
        4.3.4 心脏成纤维细胞总蛋白提取和Western blot分析第62页
        4.3.5 心脏成纤维细胞SCAD酶活性检测第62页
        4.3.6 心脏成纤维细胞游离脂肪酸含量检测第62-63页
        4.3.7 心脏成纤维细胞ATP含量的检测第63页
        4.3.8 心脏成纤维细胞羟脯氨酸含量的检测第63页
        4.3.9 心脏成纤维细胞脂肪酸 β 氧化速率的检测第63页
        4.3.10 siRNA干扰第63-64页
        4.3.11 实验分组第64页
        4.3.12 统计学分析第64页
    4.4 结果第64-70页
        4.4.1 Ang II对心脏成纤维细胞增殖的影响第64-65页
        4.4.2 Ang II诱导的心肌纤维化细胞模型中SCAD的表达变化第65-67页
        4.4.3 Ang II和siRNA-1186 对心脏成纤维细胞SCAD表达和酶活性的影响第67-68页
        4.4.4 Ang II和siRNA-1186 对心脏成纤维细胞能量代谢、细胞增殖和羟脯氨酸含量的影响第68-70页
    4.5 讨论第70-72页
第五章 SCAD对心肌纤维化的作用受PPARɑ 的调控第72-84页
    5.1 前言第72页
    5.2 材料第72-74页
        5.2.1 实验动物第72页
        5.2.2 主要药物与试剂第72-73页
        5.2.3 主要实验仪器和器材第73-74页
        5.2.4 主要试剂配置第74页
    5.3 实验方法第74-76页
        5.3.1 心脏成纤维细胞原代培养第74页
        5.3.2 心脏成纤维细胞增殖检测第74页
        5.3.3 心脏成纤维细胞总RNA提取和Real-time PCR第74-75页
        5.3.4 心脏成纤维细胞总蛋白提取和Western blot分析第75页
        5.3.5 心脏成纤维细胞SCAD酶活性检测第75页
        5.3.6 心脏成纤维细胞游离脂肪酸含量检测第75页
        5.3.7 心脏成纤维细胞ATP含量的检测第75页
        5.3.8 心脏成纤维细胞羟脯氨酸含量的检测第75页
        5.3.9 心脏成纤维细胞脂肪酸 β 氧化速率的检测第75页
        5.3.10 siRNA干扰第75页
        5.3.11 实验分组第75-76页
        5.3.12 统计学分析第76页
    5.4 结果第76-83页
        5.4.1 非诺贝特对Ang II刺激后心脏成纤维细胞中PPARα、SCAD的表达的影响第76-77页
        5.4.2 非诺贝特对Ang II刺激后心脏成纤维细胞能量代谢和细胞增殖的影响第77-80页
        5.4.3 非诺贝特对siRNA 1186 敲低SCAD基因后心脏成纤维细胞中PPARα、SCAD的表达的影响第80-81页
        5.4.4 非诺贝特对siRNA 1186 敲低SCAD基因后心脏成纤维细胞能量代谢和细胞增殖的影响第81-83页
    5.5 讨论第83-84页
总结与展望第84-85页
参考文献第85-91页
附录一 英文缩略词表第91-93页
附录二 在硕士研究生期间完成的论文第93-94页
致谢第94页

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