| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 本文所用主要英文符号缩略表 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-21页 |
| 1.1 盐胁迫对植物造成的伤害 | 第13-16页 |
| 1.1.1 盐胁迫对植物生长影响 | 第13-14页 |
| 1.1.2 盐胁迫对水分关系的影响 | 第14页 |
| 1.1.3 盐胁迫对植物矿质营养影响 | 第14页 |
| 1.1.4 盐胁迫对植物渗透调节物质积累的影响 | 第14页 |
| 1.1.5 盐胁迫对植物光合作用的影响 | 第14-15页 |
| 1.1.6 盐胁迫对膜质和活性氧系统的影响 | 第15页 |
| 1.1.7 盐胁迫对植物AsA-GSH循环的影响 | 第15-16页 |
| 1.1.8 钙在植物应答盐胁迫中的作用 | 第16页 |
| 1.2 miRNA研究进展 | 第16-17页 |
| 1.2.1 miRNA的生物合成与作用方式 | 第16-17页 |
| 1.2.2 植物miRNA的研究方法 | 第17页 |
| 1.3 胁迫相关miRNA研究进展 | 第17-18页 |
| 1.3.1 水分胁迫 | 第17-18页 |
| 1.3.2 氧化胁迫 | 第18页 |
| 1.3.3 营养胁迫 | 第18页 |
| 1.3.4 盐胁迫 | 第18页 |
| 1.4 本研究的目的与意义、研究内容以技术路线 | 第18-21页 |
| 1.4.1 本研究目的与意义 | 第18-19页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第19页 |
| 1.4.3 技术路线 | 第19-21页 |
| 第二章 NaCl处理及钙缓解对酸枣苗AsA-GSH循环的影响 | 第21-30页 |
| 2.1 材料与方法 | 第21-24页 |
| 2.1.1 试验材料与处理 | 第21-22页 |
| 2.1.2 测定项目及方法 | 第22-24页 |
| 2.2 结果与分析 | 第24-27页 |
| 2.2.1 不同处理对酸枣苗不同器官内AsA、DHA含量的影响 | 第24页 |
| 2.2.2 不同处理对酸枣苗不同器官内GSH和GSSG含量的影响 | 第24-25页 |
| 2.2.3 不同处理对酸枣苗不同器官内AsA/DHA、GSH/GSSG比值的影响 | 第25-26页 |
| 2.2.4 不同处理对酸枣苗不同器官中APX、GR、DHAR和MDHAR活性的影响 | 第26-27页 |
| 2.3 讨论 | 第27-29页 |
| 2.4 小结 | 第29-30页 |
| 第三章 NaCl胁迫下酸枣miRNA和mRNA内参的筛选 | 第30-42页 |
| 3.1 材料与方法 | 第30-34页 |
| 3.1.1 材料与处理 | 第30页 |
| 3.1.2 仪器与试剂 | 第30-31页 |
| 3.1.3 试验方法 | 第31-34页 |
| 3.2 结果与分析 | 第34-39页 |
| 3.2.1 RNA、引物以及cDNA质量检测 | 第34页 |
| 3.2.2 扩增特异性分析 | 第34-36页 |
| 3.2.3 候选内参基因的表达水平 | 第36-37页 |
| 3.2.4 miRNA候选内参基因的稳定性分析 | 第37-38页 |
| 3.2.5 mRNA候选内参基因稳定性分析 | 第38-39页 |
| 3.3 讨论 | 第39-40页 |
| 3.4 小结 | 第40-42页 |
| 第四章 NaCl胁迫下酸枣降解组测序及数据分析 | 第42-62页 |
| 4.1 材料与方法 | 第42-44页 |
| 4.1.1 材料与处理 | 第42页 |
| 4.1.2 试验方法 | 第42-44页 |
| 4.2 结果与分析 | 第44-60页 |
| 4.2.1 RNA质量检测 | 第44页 |
| 4.2.2 降解组测序数据分析 | 第44-46页 |
| 4.2.3 降解片段分类注释分析 | 第46页 |
| 4.2.4 miRNA降解位点鉴定 | 第46-47页 |
| 4.2.5 降解片段功能注释 | 第47页 |
| 4.2.6 降解文库公共及特有基因统计 | 第47-60页 |
| 4.3 讨论 | 第60-61页 |
| 4.4 小结 | 第61-62页 |
| 第五章 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 作者简介 | 第74-75页 |
| 导师评阅表 | 第75页 |
