摘要 | 第7-8页 |
Abstract | 第8页 |
英文词汇缩写表 | 第9-11页 |
1 文献综述 | 第11-22页 |
1.1 多巴胺(DA)研究进展 | 第11-13页 |
1.1.1 多巴胺及其功能 | 第11-13页 |
1.1.2 多巴胺的受体 | 第13页 |
1.2 肾脏主要钠转运通道蛋白 | 第13-19页 |
1.2.1 钠钾氯共转运体(NKCC2) | 第14-15页 |
1.2.2 上皮钠通道蛋白(ENaC) | 第15-16页 |
1.2.3 钠氯共转运体(NCC) | 第16-17页 |
1.2.4 肾3型钠氢交换体(NHE3) | 第17-18页 |
1.2.5 钠钾ATP酶(Na~+-K~+-ATPase) | 第18-19页 |
1.3 肾脏几种重要的水通道蛋白 | 第19-21页 |
1.3.1 水通道蛋白(AQPs)的结构 | 第19-20页 |
1.3.2 水通道蛋白 2(AQP2)的表达调控 | 第20-21页 |
1.4 本课题研究的目的及意义 | 第21-22页 |
2 材料和方法 | 第22-35页 |
2.1 实验方案 | 第22-26页 |
2.1.1 实验动物 | 第22页 |
2.1.2 主要仪器设备 | 第22-23页 |
2.1.3 主要试剂及耗材 | 第23-24页 |
2.1.4 主要溶液的配制 | 第24-26页 |
2.2 方法 | 第26-27页 |
2.2.1 动物实验 | 第26页 |
2.2.2 肉鸡mPAP的测定 | 第26-27页 |
2.2.3 肉鸡血清Na~+、K~+、Cl~-浓度的测定 | 第27页 |
2.3 肉鸡血清肌酐及尿素氮含量的测定 | 第27页 |
2.4 肉鸡肾组织免疫组化 | 第27-29页 |
2.4.1 取材与固定 | 第27页 |
2.4.2 组织蜡块的制作 | 第27-28页 |
2.4.3 组织切片 | 第28页 |
2.4.4 免疫组织化学染色 | 第28-29页 |
2.5 实时荧光定量PCR检测 | 第29-32页 |
2.5.1 总RNA抽提 | 第29-30页 |
2.5.2 反转录 | 第30页 |
2.5.3 引物的设计及PCR | 第30-31页 |
2.5.4 荧光定量PCR | 第31-32页 |
2.6 肉鸡肾组织中NKCC2、NCC、AQP2蛋白检测(Western Blotting) | 第32-34页 |
2.6.1 肾脏组织总蛋白提取 | 第32页 |
2.6.2 二辛可酸法(BCA)测定蛋白浓度 | 第32-33页 |
2.6.3 蛋白样品的制备 | 第33页 |
2.6.4 聚丙烯酞胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第33-34页 |
2.6.5 免疫反应 | 第34页 |
2.6.6 凝胶图像分析 | 第34页 |
2.7 数据处理 | 第34-35页 |
3 实验结果与分析 | 第35-43页 |
3.1 肉鸡平均动脉压 | 第35页 |
3.2 肉鸡血气和血清生化指标 | 第35-36页 |
3.3 肉鸡免疫组化结果 | 第36-39页 |
3.3.1 NKCC2免疫组化结果 | 第36-37页 |
3.3.2 NCC免疫组化结果 | 第37页 |
3.3.3 AQP2免疫组化结果 | 第37-39页 |
3.4 低剂量多巴胺对肉鸡肾组织基因NKCC2、NCC、AQP2转录水平的影响 | 第39页 |
3.5 Western-Blot结果 | 第39-43页 |
3.5.1 低剂量多巴胺对肉鸡肾组织NKCC2蛋白表达的影响 | 第39-40页 |
3.5.2 低剂量多巴胺对肉鸡肾组织NCC蛋白表达的影响 | 第40-42页 |
3.5.3 低剂量多巴胺对肉鸡肾组织AQP2蛋白表达的影响 | 第42-43页 |
4 讨论 | 第43-47页 |
4.1 肾脏NKCC2、NCC及AQP2对钠水的调节机理 | 第43页 |
4.2 多巴胺调控水钠通道蛋白的机制 | 第43-44页 |
4.3 血液生化指标对肾小球滤过率的影响 | 第44页 |
4.4 肉鸡肾脏NKCC2、NCC及AQP2的表达 | 第44-45页 |
4.5 水通道蛋白(AQP)与肾脏疾病的关联 | 第45-47页 |
5 小结 | 第47-48页 |
参考文献 | 第48-59页 |
致谢 | 第59页 |