| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 英文缩写词表 | 第7-12页 |
| 第1章 前言 | 第12-14页 |
| 第2章 文献综述 | 第14-22页 |
| 2.1 血管性痴呆的免疫机制 | 第14-15页 |
| 2.1.1 血管性痴呆与活性氧簇 | 第14-15页 |
| 2.1.2 血管性痴呆与大脑屏障 | 第15页 |
| 2.1.3 血管性痴呆与微胶质细胞 | 第15页 |
| 2.2 血管性痴呆的慢性脑缺血机制 | 第15-16页 |
| 2.2.1 血管性痴呆与NADPH氧化酶 | 第15-16页 |
| 2.2.2 血管性痴呆与脑白质 | 第16页 |
| 2.3 血管性痴呆的线粒体生物动能机制 | 第16-19页 |
| 2.3.1 血管性痴呆与线粒体分裂和线粒体融合 | 第16-17页 |
| 2.3.2 血管性痴呆与线粒体膜电位 | 第17-18页 |
| 2.3.3 血管性痴呆与丙酮酸脱氢酶 | 第18页 |
| 2.3.4 血管性痴呆与细胞色素C氧化酶 | 第18-19页 |
| 2.3.5 血管性痴呆与一氧化氮 | 第19页 |
| 2.4 人参皂苷Re的研究及其应用 | 第19-22页 |
| 第3章 人参皂苷Re对慢性缺血致VD大鼠的线粒体保护作用 | 第22-40页 |
| 3.1 实验材料 | 第22-24页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第22页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第22-23页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第23-24页 |
| 3.2 实验方法 | 第24-30页 |
| 3.2.1 模型制备 | 第24页 |
| 3.2.2 动物分组与给药 | 第24页 |
| 3.2.3 Morris水迷宫 | 第24-25页 |
| 3.2.4 组织切片制备 | 第25页 |
| 3.2.5 透射电镜观察 | 第25-26页 |
| 3.2.6 大鼠海马组织线粒体提取 | 第26-27页 |
| 3.2.7 线粒体蛋白提取 | 第27页 |
| 3.2.8 组织线粒体H_2O_2产率测定 | 第27-28页 |
| 3.2.9 免疫印迹实验 | 第28-29页 |
| 3.2.10 统计学处理 | 第29-30页 |
| 3.3 实验结果 | 第30-36页 |
| 3.3.1 大鼠的逃避潜伏期 | 第30页 |
| 3.3.2 HE染色结果 | 第30-31页 |
| 3.3.3 电子显微镜下Re对大鼠海马组织线粒体的保护作用 | 第31-34页 |
| 3.3.4 Re对线粒体H_2O_2的影响 | 第34-35页 |
| 3.3.5 Re对COX IV和PDH-A1蛋白表达的影响 | 第35-36页 |
| 3.4 实验讨论 | 第36-40页 |
| 第4章 人参皂苷Re对海马神经元缺氧复氧的保护作用 | 第40-56页 |
| 4.1 实验材料 | 第40-41页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第40页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第40-41页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第41页 |
| 4.2 实验方法 | 第41-45页 |
| 4.2.1 人参皂苷Re溶液的配制 | 第41-42页 |
| 4.2.2 海马神经元的提取与培养 | 第42-43页 |
| 4.2.3 细胞模型建立 | 第43页 |
| 4.2.4 乳酸脱氢酶测定 | 第43-44页 |
| 4.2.5 细胞分组与给药 | 第44页 |
| 4.2.6 Re对海马神经元的保护作用 | 第44页 |
| 4.2.7 海马神经元线粒体的提取 | 第44-45页 |
| 4.2.8 海马神经元线粒体蛋白的提取 | 第45页 |
| 4.2.9 海马神经元H_2O_2产率测定 | 第45页 |
| 4.2.10 Re对COX IV和PDH-A1蛋白表达的影响 | 第45页 |
| 4.2.11 统计学处理 | 第45页 |
| 4.3 实验结果 | 第45-53页 |
| 4.3.1 海马神经元的提取与培养 | 第45-48页 |
| 4.3.2 细胞模型的建立 | 第48-49页 |
| 4.3.3 Re对海马神经元的保护作用 | 第49-51页 |
| 4.3.4 Re对海马神经元线粒体H_2O_2的影响 | 第51-52页 |
| 4.3.5 Re对COX IV和PDH-A1蛋白表达的影响 | 第52-53页 |
| 4.4 实验讨论 | 第53-56页 |
| 第5章 实验结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-69页 |
| 作者简介及科研成果 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
