| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8页 |
| 第1章 文献综述 | 第9-19页 |
| 1.1 叶片近-远轴极性建立的研究背景 | 第9-10页 |
| 1.2 近-远轴极性建立的叶片扩张及叶边缘的形成 | 第10-12页 |
| 1.2.1 YABBY基因家族 | 第10-11页 |
| 1.2.2 WOX基因家族 | 第11-12页 |
| 1.2.3 YUCCA基因家族 | 第12页 |
| 1.3 Sussex信号的提出 | 第12-13页 |
| 1.4 Sussex信号可能的化学成分 | 第13-14页 |
| 1.5 生长素与Sussex信号的关系 | 第14-16页 |
| 1.5.1 生长素的合成和信号途径简述 | 第14-15页 |
| 1.5.2 生长素的极性运输 | 第15页 |
| 1.5.3 PIN蛋白在叶片近-远轴极性建立过程中的功能 | 第15页 |
| 1.5.4 PIN1蛋白在叶片起始过程中的定位研究 | 第15-16页 |
| 1.5.5 原基近-远轴极性建立过程中的PIN1蛋白极性定位研究 | 第16页 |
| 1.6 Airyscan技术原理 | 第16-17页 |
| 1.6.1 Airyscan的快速扫描与线性扫描 | 第17页 |
| 1.7 研究目的与意义 | 第17-19页 |
| 第2章 材料与方法 | 第19-25页 |
| 2.1 植物材料 | 第19页 |
| 2.2 化学试剂 | 第19页 |
| 2.3 植物材料的培养 | 第19-20页 |
| 2.4 PI染色方法 | 第20页 |
| 2.5 显微切割 | 第20页 |
| 2.6 化学试剂准备与涂抹 | 第20-21页 |
| 2.7 高分辨率荧光共聚焦显微观察 | 第21页 |
| 2.8 扫描电镜样品制作方法 | 第21-22页 |
| 2.9 半薄切片方法 | 第22-25页 |
| 第3章 实验结果 | 第25-37页 |
| 3.1 番茄顶端的三维观察 | 第26页 |
| 3.2 顶端L1层细胞的逐层细胞追踪方法 | 第26-28页 |
| 3.3 利用超高分辨率技术区分顶端分生组织中PIN1蛋白的极性定位 | 第28-29页 |
| 3.4 I2期PIN1蛋白介导的生长素流动模式 | 第29页 |
| 3.5 I1期PIN1蛋白介导的生长素流动模式 | 第29-30页 |
| 3.6 P1期PIN1蛋白介导的生长素流动模式 | 第30-31页 |
| 3.7 两侧切割验证叶片极性建立有效区域 | 第31-33页 |
| 3.8 叶原基两侧切割后PIN1定位分析 | 第33-34页 |
| 3.9 顶端生长素流向模型综合 | 第34-37页 |
| 第4章 讨论与总结 | 第37-41页 |
| 4.1 超高分辨率技术在研究 0.1μm级差异时的要点 | 第37页 |
| 4.2 PIN蛋白在茎顶端中分布的特异性 | 第37-38页 |
| 4.3 交汇这个新的现象和概念 | 第38页 |
| 4.4 在现有流动现象观察下的新顶端叶序生长素流动模型的建立 | 第38-39页 |
| 4.5 总结 | 第39-41页 |
| 参考文献 | 第41-47页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第47-49页 |
| 致谢 | 第49页 |
