| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 前言 | 第10-25页 |
| 1.1 植物miRNA的合成与作用机理 | 第10-11页 |
| 1.2 植物miRNA的功能 | 第11-14页 |
| 1.2.1 miRNA与植物的生长发育及激素调节 | 第11-13页 |
| 1.2.2 miRNA与植物的抗逆反应 | 第13-14页 |
| 1.3 miR156及其靶基因SPL介导的植物年龄途径 | 第14-18页 |
| 1.3.1 miR156/7 家族 | 第14-15页 |
| 1.3.2 植物发育的时相转换 | 第15-16页 |
| 1.3.3 miR156介导植物年龄途径 | 第16-18页 |
| 1.4 乙烯信号途径概述 | 第18-22页 |
| 1.4.1 乙烯信号转导通路 | 第19-21页 |
| 1.4.2 乙烯信号途径与其它途径的交叉反应 | 第21-22页 |
| 1.5 研究内容及意义 | 第22-25页 |
| 1.5.1 研究内容 | 第22-24页 |
| 1.5.2 研究意义 | 第24-25页 |
| 第2章 材料和方法 | 第25-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第25页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第25页 |
| 2.1.2 菌株 | 第25页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-37页 |
| 2.2.1 拟南芥的种植与培养 | 第25-26页 |
| 2.2.2 大肠杆菌 (DH5α)感受态制备 | 第26页 |
| 2.2.3 获得目的基因扩增片段 | 第26-27页 |
| 2.2.4 PCR产物回收 | 第27-28页 |
| 2.2.5 基因表达载体的构建 | 第28页 |
| 2.2.6 大肠杆菌转化与鉴定 | 第28-29页 |
| 2.2.7 大肠杆菌质粒的提取 | 第29-30页 |
| 2.2.8 GV3101农杆菌感受态的制备 | 第30页 |
| 2.2.9 农杆菌转化 | 第30-31页 |
| 2.2.10 拟南芥农杆菌浸染花序法转基因 | 第31页 |
| 2.2.11 EMS诱变 | 第31-32页 |
| 2.2.12 植物DNA提取 | 第32-33页 |
| 2.2.13 植物RNA的提取 | 第33-34页 |
| 2.2.14 RNA反转录 | 第34页 |
| 2.2.15 实时定量PCR | 第34-37页 |
| 第3章 实验结果与讨论 | 第37-54页 |
| 3.1 建立以表皮毛为标记的研究体系 | 第37-38页 |
| 3.2 突变体筛选与基因定位 | 第38-40页 |
| 3.3 确定突变基因 | 第40-42页 |
| 3.3.1 突变体表型恢复实验验证突变基因 | 第40-41页 |
| 3.3.2 基因等位测试验证突变基因 | 第41-42页 |
| 3.3.3 DNA测序确定突变基因 | 第42页 |
| 3.4 CTR1参与调控拟南芥幼年期到成年期的时相转换 | 第42-45页 |
| 3.5 CTR1参与调控拟南芥营养期到生殖期的时相转换 | 第45-46页 |
| 3.6 ctr1-1 中miR156与SPL9表达量的变化 | 第46-48页 |
| 3.7 乙烯通过SPL9调控拟南芥发育的时相转换 | 第48-49页 |
| 3.8 CTR1通过DELLA调控拟南芥发育时相转换 | 第49-54页 |
| 3.8.1 CTR1通过抑制DELLA促进拟南芥发育时相转换 | 第49-52页 |
| 3.8.2 DELLA通过抑制SPL9调控拟南芥发育时相转换 | 第52-54页 |
| 第4章 总结与展望 | 第54-57页 |
| 4.1 乙烯信号调控植物发育时相转换的分子机制 | 第54-56页 |
| 4.2 研究展望 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-65页 |
| 附录A 引物序列 | 第65-66页 |
| 附录B 乙烯处理生理实验 | 第66-67页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-70页 |
