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基于木质纤维产丁醇高产菌株选育及关键酶基因表达分析

摘要第4-7页
ABSTRACT第7-10页
1 文献综述第16-40页
    1.1 生物丁醇概述第16-18页
    1.2 生物法生产丁醇研究进展第18-27页
        1.2.1 生物丁醇生产菌种及改良第18-21页
        1.2.2 丁醇的生物合成途径及代谢调控第21-22页
        1.2.3 生物丁醇发酵原料第22-23页
        1.2.4 丁醇耐受性第23-25页
        1.2.5 木质纤维素原料发酵产丁醇第25-27页
    1.3 基因组改组(Genome shuffling)育种第27-33页
        1.3.1 基因组改组技术第27-30页
        1.3.2 基因组改组育种研究进展第30-33页
    1.4 进化工程育种第33-36页
        1.4.1 进化工程的原理与方法第33-34页
        1.4.2 进化工程育种研究进展第34-36页
    1.5 立题背景与意义第36-40页
        1.5.1 立题背景第36-37页
        1.5.2 立题意义第37-38页
        1.5.3 主要研究内容与技术路线第38-40页
2 基因组改组亲本菌株库的建立第40-58页
    2.1 实验材料第40-42页
        2.1.1 菌种第40页
        2.1.2 实验仪器第40-41页
        2.1.3 实验药品与试剂第41页
        2.1.4 培养基第41-42页
        2.1.5 培养方法第42页
    2.2 方法第42-46页
        2.2.1 紫外诱变第42-43页
        2.2.2 核糖体工程育种第43-44页
        2.2.3 丁醇耐受性筛选第44页
        2.2.4 遗传稳定性第44-45页
        2.2.5 分析方法第45-46页
            2.2.5.1 还原糖含量测定第45页
            2.2.5.2 乙酸、丁酸含量测定第45页
            2.2.5.3 ABE含量的测定第45-46页
    2.3 实验结果与分析第46-56页
        2.3.1 紫外诱变结果第46-49页
            2.3.1.1 第一轮紫外诱变结果第46页
            2.3.1.2 第二轮紫外诱变结果第46-48页
            2.3.1.3 第三轮诱变结果第48-49页
        2.3.2 核糖体工程育种结果第49-50页
        2.3.3 高丁醇耐受性菌株筛选结果第50-52页
        2.3.4 突变株遗传稳定性分析第52-56页
    2.4 本章小结第56-58页
3 基因组改组选育高产丁醇重组菌第58-81页
    3.1 实验材料第58-59页
        3.1.1 菌种第58页
        3.1.2 实验仪器第58页
        3.1.3 实验试剂第58-59页
        3.1.4 培养基及溶液第59页
    3.2 实验方法第59-62页
        3.2.1 原生质体的制备第59-60页
        3.2.2 原生质体的再生与融合第60页
        3.2.3 基因组改组参数的计算第60-61页
        3.2.4 基因组改组第61-62页
            3.2.4.1 第一轮基因组改组第61页
            3.2.4.2 第二基因组改组与第三轮基因组改组第61-62页
            3.2.4.3 重组菌株的筛选第62页
            3.2.4.4 重组菌株的稳定性检验第62页
    3.3 实验结果与分析第62-79页
        3.3.1 原生质体制备的影响因素第62-66页
            3.3.1.1 菌体菌龄对原生质体制备的影响第63-64页
            3.3.1.2 酶浓度对原生质体制备影响第64页
            3.3.1.3 酶解温度对原生质体形成的影响第64-65页
            3.3.1.4 酶处理时间对原生质体形成的影响第65-66页
        3.3.2 中心组合实验设计优化第66-68页
        3.3.3 响应面模型分析第68-70页
        3.3.4 原生质体制备结果第70-71页
        3.3.5 原生质体融合条件筛选第71-74页
            3.3.5.1 PEG4000浓度对原生质体融合的影响第71-72页
            3.3.5.2 融合温度对原生质体融合的影响第72页
            3.3.5.3 融合时间对原生质体融合的影响第72-73页
            3.3.5.4 Ca~(2+)浓度对原生质体融合的影响第73-74页
        3.3.6 基因组改组筛选高产丁醇优良菌株第74-77页
            3.3.6.1 第一轮基因组改组第74-75页
            3.3.6.2 第二轮基因组改组第75-76页
            3.3.6.3 第三轮基因组改组第76-77页
        3.3.7 重组菌株的发酵性能稳定性检验第77-79页
    3.4 本章小结第79-81页
4 重组菌株在高浓度杨木水解液中的进化培养研究第81-95页
    4.1 实验材料第81-82页
        4.1.1 菌种第81页
        4.1.2 实验仪器第81页
        4.1.3 实验试剂第81-82页
        4.1.4 培养基第82页
    4.2 实验方法第82-84页
        4.2.1 选择压力的的确定第82-83页
        4.2.2 菌株代时的确定第83页
        4.2.3 恒定杨木水解液浓度下的进化培养第83-84页
        4.2.4 梯度发酵底物浓度下的进化培养第84页
        4.2.5 进化菌株的筛选第84页
    4.3 实验结果与讨论第84-93页
        4.3.1 菌株代时的确定第84-85页
        4.3.2 选择压力的确定第85-87页
            4.3.2.1 重组菌株丁醇耐受性平板存活率筛选结果第85页
            4.3.2.2 不同杨木水解液浓度对丁醇发酵的影响第85-87页
        4.3.3 进化策略的选择第87-91页
            4.3.3.1 恒定底物浓度下的培养进化第87-90页
            4.3.3.2 梯度底物浓度下的进化培养第90-91页
        4.3.4 两种不同底物浓度下调控进化分析第91-93页
            4.3.4.1 菌株发酵过程的比较第91-93页
    4.4 本章小结第93-95页
5 进化菌株利用杨木水解液发酵产丁醇条件优化第95-114页
    5.1 材料第95-96页
        5.1.1 菌种第95-96页
        5.1.2 主要实验仪器与试剂第96页
        5.1.3 培养基第96页
        5.1.4 培养方法第96页
    5.2 方法第96-98页
        5.2.1 检测方法第96页
        5.2.2 发酵培养基组分Plackett-Burman筛选实验第96-97页
        5.2.3 重要组分中心组合实验设计(CCD)第97-98页
        5.2.4 中心组合实验设计(CCD)优化发酵条件第98页
    5.3 实验结果与分析第98-113页
        5.3.1 Plackett-Burman筛选结果第98-102页
        5.3.2 重要组分CCD优化结果第102-107页
        5.3.3 发酵条件CCD响应面优化结果第107-113页
    5.4 本章小结第113-114页
6 进化菌株丁醇合成途径中关键基因的差异表达研究第114-123页
    6.1 实验材料第115页
        6.1.1 样品采集与处理第115页
        6.1.2 实验仪器与试剂第115页
    6.2 实验方法第115-118页
        6.2.1 总RNA提取第115-116页
        6.2.2 RNA质量检测第116页
        6.2.3 实时荧光定量PCR第116-118页
        6.2.4 实验数据分析第118页
    6.3 实验结果分析第118-122页
        6.3.1 RNA样品质检结果第118-119页
        6.3.2 进化菌株丁醇生物合成途径中关键酶基因表达分析第119-122页
    6.4 本章小结第122-123页
7 结论与展望第123-126页
    7.1 主要结论第123-125页
    7.2 创新点第125页
    7.3 展望第125-126页
参考文献第126-140页
附录A第140-142页
附录B第142-143页
附录C (攻读学位期间的主要学术成果)第143-144页
致谢第144页

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