| 摘要 | 第1-14页 |
| Abstract | 第14-18页 |
| 第一章 前言 | 第18-47页 |
| ·海洋细菌的研究概况 | 第18-19页 |
| ·海水养殖环境中的细菌 | 第19-27页 |
| ·海水养殖鱼类病原菌 | 第19-22页 |
| ·海水养殖鱼类病原菌致病机制 | 第22-23页 |
| ·海水养殖鱼类细菌性病害的防治措施 | 第23-27页 |
| ·美人鱼发光杆菌杀鱼亚种 | 第27-29页 |
| ·迟缓爱德华氏菌 | 第29-36页 |
| ·迟缓爱德华氏菌的流行病学 | 第29-31页 |
| ·迟缓爱德华氏菌的致病机制 | 第31-36页 |
| ·海洋新菌资源的开发利用 | 第36-37页 |
| ·海洋新菌的分类鉴定 | 第37-45页 |
| ·海洋细菌的命名 | 第37页 |
| ·海洋细菌的分类 | 第37-38页 |
| ·海洋新菌的分类鉴定程序及方法 | 第38-45页 |
| ·本论文研究的目的和意义 | 第45-47页 |
| 第二章 美人鱼发光杆菌杀鱼亚种的分离鉴定 | 第47-64页 |
| ·实验材料与仪器 | 第48-51页 |
| ·培养基 | 第48-50页 |
| ·试剂和仪器 | 第50页 |
| ·其他 | 第50-51页 |
| ·实验方法 | 第51-57页 |
| ·细菌分离培养与纯培养 | 第51页 |
| ·人工感染实验 | 第51-52页 |
| ·药敏试验 | 第52页 |
| ·表型特征鉴定 | 第52-53页 |
| ·16S rDNA的克隆鉴定 | 第53-56页 |
| ·16S rDNA的同源序列分析及进化树构建 | 第56-57页 |
| ·实验结果 | 第57-62页 |
| ·病原菌的分离及菌落特征 | 第57页 |
| ·人工感染实验 | 第57-58页 |
| ·药敏试验 | 第58页 |
| ·表型特征 | 第58-61页 |
| ·16S rDNA的同源序列及进化树分析 | 第61-62页 |
| ·讨论 | 第62-64页 |
| 第三章 迟缓爱德华氏菌的分离鉴定、致病机理及其病害防治研究 | 第64-105页 |
| ·实验材料与仪器 | 第66-70页 |
| ·菌株 | 第66-67页 |
| ·培养基 | 第67-68页 |
| ·试剂和仪器 | 第68-69页 |
| ·其他 | 第69-70页 |
| ·实验方法 | 第70-82页 |
| ·迟缓爱德华氏菌的分离鉴定 | 第70-72页 |
| ·细菌分离培养与纯培养 | 第70页 |
| ·人工感染实验 | 第70-71页 |
| ·药敏试验 | 第71页 |
| ·表型特征鉴定 | 第71页 |
| ·16S rDNA的克隆鉴定 | 第71-72页 |
| ·16S rDNA的同源序列分析 | 第72页 |
| ·迟缓爱德华氏菌致病机理研究 | 第72-79页 |
| ·胞外酶活性检测 | 第72页 |
| ·细菌表面疏水性测定 | 第72-73页 |
| ·抗虹鳟鱼血清杀伤作用 | 第73页 |
| ·铁载体检测 | 第73-74页 |
| ·自动凝集现象观察 | 第74页 |
| ·血凝集现象 | 第74-75页 |
| ·亚细胞成分的聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)分析 | 第75-78页 |
| ·毒性菌株特异性蛋白的指纹图谱分析 | 第78-79页 |
| ·人工感染实验 | 第79页 |
| ·迟缓爱德华氏菌分离株灭活疫苗对大菱鲆的保护作用 | 第79-80页 |
| ·实验鱼及饲养条件 | 第79页 |
| ·灭活疫苗的制备 | 第79-80页 |
| ·疫苗的安全性检测 | 第80页 |
| ·大菱鲆的免疫 | 第80页 |
| ·血清凝集抗体效价测定 | 第80页 |
| ·疫苗免疫保护力的测定 | 第80页 |
| ·大蒜作为免疫刺激剂对虹鳟鱼的保护作用 | 第80-82页 |
| ·大蒜对迟缓爱德华氏菌的抑制作用 | 第80-81页 |
| ·大蒜对虹鳟鱼健康状况的影响 | 第81页 |
| ·大蒜饵料的制备 | 第81页 |
| ·试验鱼饲喂及饲养条件 | 第81页 |
| ·饲喂大蒜对虹鳟鱼保护力的测定 | 第81-82页 |
| ·实验结果 | 第82-100页 |
| ·迟缓爱德华氏菌的分离鉴定 | 第82-88页 |
| ·病原菌的分离及菌落特征 | 第82页 |
| ·人工感染试验 | 第82-83页 |
| ·药敏试验 | 第83-84页 |
| ·表型特征 | 第84-87页 |
| ·16S rDNA的同源序列及进化树分析 | 第87-88页 |
| ·迟缓爱德华氏菌致病机理研究 | 第88-96页 |
| ·胞外酶活性及其他细胞特性 | 第88-90页 |
| ·亚细胞结构对对虹鳟鱼的致病性 | 第90-91页 |
| ·ECP中的蛋白质和LPS浓度 | 第91-92页 |
| ·ECP、OMP和LPS的SDS-PAGE分析 | 第92-96页 |
| ·毒性菌株特异性蛋白的指纹图谱分析 | 第96页 |
| ·迟缓爱德华氏菌分离株灭活疫苗对大菱鲆的保护作用 | 第96-99页 |
| ·疫苗质量及安全性 | 第96-97页 |
| ·大菱鲆的体液免疫反应 | 第97页 |
| ·疫苗的免疫保护力 | 第97-99页 |
| ·大蒜作为免疫刺激剂对虹鳟鱼的保护作用 | 第99-100页 |
| ·大蒜对迟缓爱德华氏菌的抑制作用 | 第99页 |
| ·大蒜对虹鳟鱼健康状况的影响 | 第99页 |
| ·饲喂大蒜对虹鳟鱼的保护性 | 第99-100页 |
| ·讨论 | 第100-105页 |
| ·迟缓爱德华氏菌的分离鉴定 | 第100-101页 |
| ·迟缓爱德华氏菌致病机理 | 第101-103页 |
| ·迟缓爱德华氏菌分离株灭活疫苗对大菱鲆的保护作用 | 第103-104页 |
| ·大蒜作为免疫刺激剂对虹鳟鱼的保护作用 | 第104-105页 |
| 第四章 海洋新菌-非典型弧菌(Vibrio atypicus)的分类鉴定 | 第105-134页 |
| ·实验材料与仪器 | 第106-109页 |
| ·菌株 | 第106页 |
| ·培养基 | 第106-108页 |
| ·试剂和仪器 | 第108-109页 |
| ·其他 | 第109页 |
| ·实验方法 | 第109-117页 |
| ·表型特征鉴定 | 第109-111页 |
| ·细菌基因组DNA的提取及纯化 | 第111-112页 |
| ·16S rDNA的扩增、测序和序列分析 | 第112页 |
| ·多位点序列分析(Multilocus sequence analysis,MLSA) | 第112-114页 |
| ·G+C含量测定 | 第114页 |
| ·DNA-DNA杂交 | 第114-117页 |
| ·结果与分析 | 第117-133页 |
| ·表型特征 | 第117-121页 |
| ·16S rDNA同源序列及进化树分析 | 第121-123页 |
| ·多位点序列分析 | 第123-133页 |
| ·G+C含量 | 第133页 |
| ·DNA-DNA杂交 | 第133页 |
| ·结论 | 第133-134页 |
| 第五章 海洋新菌-凝集海滩杆菌(Aestuariibacter aggregatus)的分类鉴定 | 第134-152页 |
| ·实验材料与仪器 | 第135-138页 |
| ·菌株 | 第135页 |
| ·培养基 | 第135-137页 |
| ·试剂和仪器 | 第137-138页 |
| ·其他 | 第138页 |
| ·实验方法 | 第138-141页 |
| ·表型特征鉴定 | 第138-140页 |
| ·细菌基因组DNA的提取及纯化 | 第140-141页 |
| ·16S rDNA的扩增、测序和序列分析 | 第141页 |
| ·G+C含量测定 | 第141页 |
| ·结果与分析 | 第141-150页 |
| ·表型特征 | 第141-148页 |
| ·16S rDNA同源序列及进化树分析 | 第148-150页 |
| ·G+C含量 | 第150页 |
| ·结论 | 第150-152页 |
| 第六章 海洋新菌-惰性解油螺旋菌(Oleispira lenta)的分类鉴定 | 第152-164页 |
| ·实验材料与仪器 | 第153-154页 |
| ·菌株 | 第153页 |
| ·培养基 | 第153页 |
| ·试剂和仪器 | 第153页 |
| ·其他 | 第153-154页 |
| ·实验方法 | 第154-156页 |
| ·表型特征鉴定 | 第154-155页 |
| ·细菌基因组DNA的提取及纯化 | 第155页 |
| ·16S rDNA的克隆鉴定和序列分析 | 第155-156页 |
| ·结果与分析 | 第156-163页 |
| ·表型特征 | 第156-160页 |
| ·16S rDNA同源序列及进化树分析 | 第160-161页 |
| ·G+C含量 | 第161-163页 |
| ·结论 | 第163-164页 |
| 第七章 总结 | 第164-166页 |
| ·全文总结 | 第164-165页 |
| ·主要创新点 | 第165-166页 |
| 参考文献 | 第166-190页 |
| 附录Ⅰ 溶液配方 | 第190-192页 |
| 附录Ⅱ 在学期问发表和撰写的学术论文 | 第192-193页 |
| 致谢 | 第193页 |
