| 中文摘要 | 第4-9页 |
| Abstract | 第9-15页 |
| 缩略语/符号说明 | 第20-22页 |
| 前言 | 第22-28页 |
| 研究现状、成果 | 第22-27页 |
| 研究目的、方法 | 第27-28页 |
| 一、高糖对雪旺细胞(RSC96)损伤的影响 | 第28-37页 |
| 1.1 材料和方法 | 第28-32页 |
| 1.1.1 实验细胞及器材 | 第28页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第28-29页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第29页 |
| 1.1.4 RSC96细胞复苏与冻存 | 第29-30页 |
| 1.1.5 RSC96细胞培养传代 | 第30页 |
| 1.1.6 分组及处理 | 第30页 |
| 1.1.7 各观测指标的测定 | 第30-32页 |
| 1.1.8 统计学处理 | 第32页 |
| 1.2 结果 | 第32-37页 |
| 1.2.1 SC细胞培养过程中的形态学观察 | 第32页 |
| 1.2.2 MTT法测定各组细胞增殖情况 | 第32-34页 |
| 1.2.3 不同浓度高糖培养液在各时点对SCs释放炎症因子的影响 | 第34-36页 |
| 1.2.4 不同浓度高糖培养液在各时点对SCs释放MDA、8-OHDG的影响 | 第36-37页 |
| 二、富氢培养液对高糖诱导的雪旺细胞损伤的影响 | 第37-52页 |
| 2.1 材料与方法 | 第37-42页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第37页 |
| 2.1.2 主要器材 | 第37页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第37页 |
| 2.1.4 富氢液的制备 | 第37-38页 |
| 2.1.5 RSC96细胞复苏与冻存 | 第38页 |
| 2.1.6 分组及处理 | 第38页 |
| 2.1.7 各观测指标的测定 | 第38-41页 |
| 2.1.8 统计学处理 | 第41-42页 |
| 2.2 结果 | 第42-47页 |
| 2.2.1 SCs细胞培养过程中的形态学观察 | 第42页 |
| 2.2.2 MTT法测定各组细胞增殖情况 | 第42-43页 |
| 2.2.3 48h末，含氢培养液对对高糖诱导的SC细胞释放MDA、SOD的影响 | 第43页 |
| 2.2.4 48h末，含氢培养液对对高糖诱导的SC细胞释放炎症因子IL-6、HMGB1的影响 | 第43-44页 |
| 2.2.5 48h末，含氢培养液对高糖诱导的SC细胞凋亡指数的影响 | 第44-46页 |
| 2.2.6 48h末，含氢培养液对高糖诱导的SC细胞 Caspase-3表达的影响 | 第46-47页 |
| 2.3 讨论 | 第47-50页 |
| 2.3.1 不同浓度高糖对SC形态学的影响 | 第47-48页 |
| 2.3.2 不同浓度高糖对SC增殖、及氧化应激的影响 | 第48页 |
| 2.3.3 不同浓度高糖对SC的炎症反应影响 | 第48页 |
| 2.3.4 不同浓度富氢液对高糖培养下SC的增殖影响 | 第48-50页 |
| 2.4 小结 | 第50-52页 |
| 三、饱和富氢液对糖尿病大鼠神经病变 | 第52-66页 |
| 3.1 材料与方法 | 第52-53页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第52页 |
| 3.1.2 材料 | 第52-53页 |
| 3.2 实验方法 | 第53-59页 |
| 3.2.1 糖尿病动物模型的建立 | 第53页 |
| 3.2.2 饱和富氢液的制备 | 第53页 |
| 3.2.3 实验分组及处理 | 第53-54页 |
| 3.2.4 行为学实验 | 第54页 |
| 3.2.5 神经功能实验 | 第54-55页 |
| 3.2.6 样本的收集与提取 | 第55页 |
| 3.2.7 ELISA法测定炎症因子水平 | 第55-56页 |
| 3.2.8 坐骨神经组织丙二醛含量及抗氧化酶活性活性的检测 | 第56-58页 |
| 3.2.9 统计学分析 | 第58-59页 |
| 3.3 结果 | 第59-66页 |
| 3.3.1 致死率 | 第59页 |
| 3.3.2 血糖、体重和AGEs含量降低 | 第59-60页 |
| 3.3.3 行为学测定 | 第60-62页 |
| 3.3.4 饱和富氢液的治疗对于坐骨神经MNCV影响 | 第62-63页 |
| 3.3.5 饱和富氢液的治疗对于坐骨神经炎症因子影响 | 第63-64页 |
| 3.3.6 饱和富氢液处理对氧化应激的影响 | 第64-65页 |
| 3.3.7 饱和富氢液的治疗对于坐骨神经凋亡相关蛋白表达的影响 | 第65-66页 |
| 四、Mito-K_(ATP)通道参与富氢液对糖尿病大鼠外周神经病变的保护 | 第66-84页 |
| 4.1 材料与方法 | 第66页 |
| 4.2 实验方法 | 第66-70页 |
| 4.2.1 糖尿病动物模型的建立及纳入实验标准 | 第66-67页 |
| 4.2.2 饱和富氢液的制备 | 第67页 |
| 4.2.3 实验分组及处理 | 第67页 |
| 4.2.4 行为学实验 | 第67页 |
| 4.2.5 神经功能实验 | 第67页 |
| 4.2.6 样本的收集与提取 | 第67页 |
| 4.2.7 炎症因子水平的测定 | 第67页 |
| 4.2.8 坐骨神经组织丙二醛含量及抗氧化酶活性活性的检测 | 第67-68页 |
| 4.2.9 Western blotting法检测坐骨神经凋亡相关蛋白Caspase-3 的表达 | 第68-69页 |
| 4.2.10 TUNEL法染色 | 第69-70页 |
| 4.3 统计学分析 | 第70-71页 |
| 4.4 结果 | 第71-79页 |
| 4.4.1 致死率 | 第71页 |
| 4.4.2 血糖、体重和AGEs含量降低 | 第71页 |
| 4.4.3 行为学测定 | 第71-73页 |
| 4.4.4 ATP敏感性钾通道对于饱和富氢液改善坐骨神经MNCV影响 | 第73-74页 |
| 4.4.5 ATP敏感性钾通道对于饱和富氢液调控坐骨神经炎症因子的影响 | 第74-76页 |
| 4.4.6 ATP敏感性钾通道对于饱和富氢液抗氧化应激的影响 | 第76-77页 |
| 4.4.7 ATP敏感性钾通道对于坐骨神经Caspase-3 活性以及坐骨神经细胞凋亡的影响 | 第77-79页 |
| 4.5 讨论 | 第79-84页 |
| 4.5.1 糖尿病神经病变大鼠模型建立 | 第79页 |
| 4.5.2 不同剂量的饱和富氢液处理对于糖尿病神经病变大鼠血清AGEs含量的影响 | 第79-80页 |
| 4.5.3 不同剂量的饱和富氢液处理对于糖尿病神经病变大鼠行为学、坐骨神经MNCV的改变影响 | 第80页 |
| 4.5.4 饱和富氢液处理对于糖尿病神经病变大鼠氧化应激水平的影响 | 第80-81页 |
| 4.5.5 不同剂量的饱和富氢液处理对于糖尿病神经病变大鼠炎症因子水平的影响 | 第81-82页 |
| 4.5.6 饱和富氢液处理对于糖尿病神经病变大鼠坐骨神经细胞凋亡影响 | 第82页 |
| 4.5.7Mito-KATP通道在饱和富氢液减轻糖尿病大鼠神经病变中的作用 | 第82-84页 |
| 全文结论 | 第84-85页 |
| 论文创新点 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-99页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第99-100页 |
| 综述 富氢生理盐水治疗相关疾病机制研究进展 | 第100-107页 |
| 综述参考文献 | 第104-107页 |
| 致谢 | 第107页 |
