| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-20页 |
| 研究现状、成果 | 第12-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-20页 |
| 引言 | 第20-22页 |
| 第一部分 SUMOs成员在氧/糖剥夺（OGD）神经元模型中的蛋白表达变化 | 第22-45页 |
| 前言 | 第22页 |
| 1.1 对象和方法 | 第22-38页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第22-25页 |
| 1.1.1.1 主要仪器 | 第22-23页 |
| 1.1.1.2 主要试剂及耗材 | 第23-24页 |
| 1.1.1.3 主要试剂配制 | 第24-25页 |
| 1.1.1.4 实验动物与饲养条件 | 第25页 |
| 1.1.2 技术路线 | 第25页 |
| 1.1.3 方法 | 第25-38页 |
| 1.1.3.1 海马神经元的原代分离培养 | 第25-27页 |
| 1.1.3.2 细胞免疫荧光方法鉴定神经元标记蛋白表达 | 第27-28页 |
| 1.1.3.3 氧/糖剥夺（OGD）神经元模型的建立 | 第28页 |
| 1.1.3.4 细胞原位凋亡实验 | 第28-29页 |
| 1.1.3.5 Western Blot实验检测SUMOs的表达变化 | 第29-37页 |
| 1.1.3.6 细胞免疫荧光方法检测SUMO-1 和SUMO-2/3 表达定位变化 | 第37-38页 |
| 1.1.3.7 统计学方法 | 第38页 |
| 1.2 结果 | 第38-45页 |
| 1.2.1 神经元的分离培养结果 | 第38-39页 |
| 1.2.2 细胞免疫荧光鉴定结果 | 第39-40页 |
| 1.2.3 氧/糖剥夺神经元模型的细胞形态学变化 | 第40-41页 |
| 1.2.4 细胞原位凋亡检测结果 | 第41-42页 |
| 1.2.5 Western Blot检测结果 | 第42-43页 |
| 1.2.6 免疫荧光检测结果 | 第43-45页 |
| 第二部分 SUMOs对小鼠大脑中动脉栓塞模型受损神经元的保护作用研究 | 第45-55页 |
| 前言 | 第45页 |
| 2.1 对象和方法 | 第45-51页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第45-46页 |
| 2.1.1.1 主要仪器 | 第45-46页 |
| 2.1.1.2 主要试剂及耗材 | 第46页 |
| 2.1.1.3 主要试剂配制 | 第46页 |
| 2.1.1.4 实验动物与饲养条件 | 第46页 |
| 2.1.2 技术路线 | 第46-47页 |
| 2.1.3 方法 | 第47-51页 |
| 2.1.3.1 小鼠MCAO模型的建立 | 第47-49页 |
| 2.1.3.2 小鼠神经功能缺损评分 | 第49页 |
| 2.1.3.3 HE染色测量脑梗死体积 | 第49-50页 |
| 2.1.3.4 TUNEL方法检测海马细胞凋亡情况 | 第50-51页 |
| 2.1.3.5 统计学方法 | 第51页 |
| 2.2 结果 | 第51-55页 |
| 2.2.1 小鼠神经功能缺陷评分结果 | 第51-53页 |
| 2.2.2 小鼠脑梗死体积测量结果 | 第53-54页 |
| 2.2.3 海马神经元细胞凋亡百分率比较结果 | 第54-55页 |
| 讨论 | 第55-85页 |
| 结论 | 第85-86页 |
| 论文创新点 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-94页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第94-95页 |
| 综述 | 第95-103页 |
| 参考文献 | 第100-103页 |
| 致谢 | 第103页 |
