| 摘要 | 第2-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 第一部分 浒苔多糖对脓毒症脑病大鼠的脑保护作用 | 第14-26页 |
| 1 材料 | 第14页 |
| 1.1 实验动物 | 第14页 |
| 1.2 主要试剂 | 第14页 |
| 1.3 主要仪器 | 第14页 |
| 2 方法 | 第14-17页 |
| 2.1 动物分组 | 第14-15页 |
| 2.2 动物模型的制备 | 第15-16页 |
| 2.3 术后动物给药 | 第16页 |
| 2.4 生命体征监测 | 第16页 |
| 2.5 旷场实验 | 第16页 |
| 2.6 Morris水迷宫实验 | 第16-17页 |
| 2.7 Y-迷宫测试 | 第17页 |
| 2.8 统计学分析 | 第17页 |
| 3 结果 | 第17-22页 |
| 3.1 一般情况 | 第17-19页 |
| 3.2 旷场实验检测大鼠的一般运动能力 | 第19页 |
| 3.3 Morris水迷宫实验检测大鼠的空间学习、记忆能力 | 第19-22页 |
| 3.4 Y-迷宫测试检测大鼠学习记忆能力 | 第22页 |
| 4 讨论 | 第22-26页 |
| 4.1 脓毒症模型 | 第22-23页 |
| 4.2 脓毒症相关性脑病 | 第23-26页 |
| 第二部分 浒苔多糖对脓毒症脑病大鼠脑保护作用的可能相关机制 | 第26-49页 |
| 1 材料 | 第26-29页 |
| 1.1 实验动物 | 第26页 |
| 1.2 主要试剂 | 第26-27页 |
| 1.3 主要试剂配制方法 | 第27-28页 |
| 1.4 主要仪器 | 第28-29页 |
| 2 方法 | 第29-37页 |
| 2.1 动物分组 | 第29页 |
| 2.2 动物模型的制备 | 第29页 |
| 2.3 术后动物给药 | 第29页 |
| 2.4 血清氨浓度测定 | 第29页 |
| 2.5 海马组织的采集 | 第29-31页 |
| 2.6 海马组织匀浆的制备 | 第31页 |
| 2.7 海马组织 NO 检测 | 第31-32页 |
| 2.8 海马组织 i NOS 检测 | 第32页 |
| 2.9 海马组织 MDA 的测定 | 第32-33页 |
| 2.10 海马组织 SOD 活力的测定 | 第33-34页 |
| 2.11 海马组织 CAT 活性的测定 | 第34页 |
| 2.12 海马组织 GSH-Px 检测 | 第34-35页 |
| 2.13 Western blot | 第35-37页 |
| 2.14 统计学分析 | 第37页 |
| 3 结果 | 第37-42页 |
| 4 讨论 | 第42-49页 |
| 4.1 脓毒症相关性脑病发病机制 | 第42-45页 |
| 4.2 氧化应激 | 第45-47页 |
| 4.3 BDNF-TrkB信号通路 | 第47-49页 |
| 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-58页 |
| 综述 脓毒症治疗的研究进展 | 第58-70页 |
| 综述参考文献 | 第65-70页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第70-71页 |
| 缩略词索引 | 第71-72页 |
| 附录 | 第72-73页 |
| 附图 | 第73-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |