摘要 | 第2-6页 |
Abstract | 第6-9页 |
引言 | 第12-14页 |
材料与方法 | 第14-26页 |
1 实验材料 | 第14-16页 |
1.1 实验动物 | 第14页 |
1.2 实验药品及试剂 | 第14-15页 |
1.3 实验仪器设备 | 第15-16页 |
1.4 常用试剂配备 | 第16页 |
2 实验方法 | 第16-26页 |
2.1 热休克蛋白 90α“F-5”基因载体的构建及蛋白表达 | 第16-18页 |
2.2 动物分组方法 | 第18页 |
2.3 给药方法 | 第18-19页 |
2.4 构建轴型皮瓣静脉淤血型缺血再灌注损伤的动物模型 | 第19-24页 |
2.5 皮瓣大体观察 | 第24页 |
2.6 皮瓣血流灌注量的检测 | 第24页 |
2.7 皮瓣成活率的测定 | 第24页 |
2.8 皮瓣的病理组织学检查和新生微血管密度计数(MVD) | 第24-25页 |
2.9 统计分析 | 第25-26页 |
结果 | 第26-40页 |
1“F-5”基因表达蛋白的定性和定量分析结果 | 第26页 |
1.1“F-5”基因表达蛋白的定性分析 | 第26页 |
1.2“F-5”基因mRNA的表达情况 | 第26页 |
2 皮瓣大体观察 | 第26-29页 |
3 皮瓣血流灌注量的变化情况 | 第29-35页 |
4 皮瓣的成活率 | 第35-36页 |
5 皮瓣组织学检查 | 第36页 |
6 皮瓣新生血管情况 | 第36-40页 |
讨论 | 第40-48页 |
1 皮瓣静脉淤血型缺血再灌注损伤的临床表现及分期 | 第40页 |
2 皮瓣静脉淤血型缺血再灌注损伤的发生机制 | 第40-42页 |
2.1 丙二醛和超氧化物歧化酶活力变化 | 第41页 |
2.2 白细胞介导的微循环障碍 | 第41页 |
2.3 微血管循环障碍 | 第41-42页 |
3 热休克蛋白 90α的作用及相关研究 | 第42-43页 |
4 皮瓣静脉淤血型缺血再灌注损伤动物模型中部分细节的探讨 | 第43-46页 |
4.1 血流灌注量检测方法 | 第43-44页 |
4.2 给药方式 | 第44页 |
4.3 阻断时间 | 第44-45页 |
4.4 皮瓣成活率的测定 | 第45页 |
4.5 免疫组化染色指标的选择 | 第45-46页 |
5 热休克蛋白 90α 干预皮瓣静脉淤血型缺血再灌注损伤的作用机制 | 第46页 |
6 研究中的不足之处及改进措施 | 第46-48页 |
6.1 样本量的不足及修正 | 第46页 |
6.2 热休克蛋白 90α促进细胞运动特性的印证实验 | 第46页 |
6.3 内源性热休克蛋白 90α的影响因素 | 第46-48页 |
结论 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-54页 |
综述 | 第54-80页 |
综述参考文献 | 第71-80页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第80-81页 |
致谢 | 第81-82页 |