| 摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 缩略词中英文对照表 | 第13-21页 |
| 第一章 绪论 | 第21-47页 |
| 1.1 问题的提出 | 第21-22页 |
| 1.2 精神类药物研究现状 | 第22-35页 |
| 1.2.1 精神类药物的种类和使用情况 | 第22-25页 |
| 1.2.2 精神类药物在环境中的污染现状 | 第25-30页 |
| 1.2.3 环境中精神类药物的检测分析方法 | 第30-32页 |
| 1.2.4 水处理系统中精神类药物的去除方式 | 第32-34页 |
| 1.2.5 精神类药物对非目标水生生物的毒性效应 | 第34-35页 |
| 1.3 抗抑郁类精神药物氟西汀的研究现状 | 第35-38页 |
| 1.3.1 抗抑郁类精神药物的分类和使用情况分析 | 第35-36页 |
| 1.3.2 抗抑郁类精神药物氟西汀的特征和在环境中的污染现状 | 第36-37页 |
| 1.3.3 抗抑郁类精神药物氟西汀对非目标水生生物的毒性效应 | 第37-38页 |
| 1.4 Read-across假设和鱼血模型在药物水环境风险研究中的应用 | 第38-40页 |
| 1.5 研究目的和意义 | 第40-42页 |
| 1.5.1 实验材料的选取 | 第40-41页 |
| 1.5.2 本研究的目的和意义 | 第41-42页 |
| 1.6 研究内容和技术路线 | 第42-46页 |
| 1.7 课题来源 | 第46-47页 |
| 第二章 氟西汀长期暴露后红鲫鱼对药物的蓄积规律 | 第47-58页 |
| 2.1 引言 | 第47页 |
| 2.2 实验材料和方法 | 第47-52页 |
| 2.2.1 主要药品和试剂 | 第47-48页 |
| 2.2.2 主要仪器与设备 | 第48页 |
| 2.2.3 实验动物及饲养条件 | 第48页 |
| 2.2.4 实验设计 | 第48-49页 |
| 2.2.5 实验准备与溶液的配制 | 第49页 |
| 2.2.6 实验样本的采集 | 第49-50页 |
| 2.2.7 样本预处理 | 第50页 |
| 2.2.8 仪器分析方法 | 第50页 |
| 2.2.9 质量保证与质量控制（QA/QC） | 第50-51页 |
| 2.2.10 数据处理 | 第51页 |
| 2.2.11 鱼血浆中氟西汀浓度的预测 | 第51-52页 |
| 2.3 结果 | 第52-55页 |
| 2.3.1 红鲫鱼生理指标 | 第52页 |
| 2.3.2 水样中氟西汀的浓度 | 第52-53页 |
| 2.3.3 鱼体各器官中氟西汀的浓度 | 第53页 |
| 2.3.4 鱼体各器官对于氟西汀的蓄积能力 | 第53-54页 |
| 2.3.5 鱼血浆中氟西汀浓度的预测和ER值的估算 | 第54-55页 |
| 2.4 分析与讨论 | 第55-57页 |
| 2.5 小结 | 第57-58页 |
| 第三章 氟西汀短期暴露后红鲫鱼对药物的蓄积净化特征及其毒性效应 | 第58-72页 |
| 3.1 引言 | 第58-59页 |
| 3.2 实验材料和方法 | 第59-63页 |
| 3.2.1 主要药品和试剂 | 第59页 |
| 3.2.2 主要仪器与设备 | 第59-60页 |
| 3.2.3 实验动物及饲养条件 | 第60页 |
| 3.2.4 实验设计 | 第60页 |
| 3.2.5 实验准备与溶液的配制 | 第60页 |
| 3.2.6 实验样本的采集 | 第60-61页 |
| 3.2.7 样本预处理 | 第61页 |
| 3.2.8 仪器分析方法 | 第61页 |
| 3.2.9 AChE和抗氧化酶活力的测定 | 第61-63页 |
| 3.2.10 质量保证与质量控制（QA/QC） | 第63页 |
| 3.2.11 数据处理 | 第63页 |
| 3.3 结果 | 第63-69页 |
| 3.3.1 鱼体各器官中氟西汀的浓度 | 第63-64页 |
| 3.3.2 鱼体各器官对于氟西汀的蓄积能力 | 第64页 |
| 3.3.3 鱼脑中AChE活力 | 第64-65页 |
| 3.3.4 鱼肝脏中抗氧化酶活力 | 第65-67页 |
| 3.3.5 相关性分析 | 第67-69页 |
| 3.4 分析与讨论 | 第69-70页 |
| 3.5 小结 | 第70-72页 |
| 第四章 氟西汀短期暴露后斑马鱼对药物的蓄积和毒性反应 | 第72-105页 |
| 4.1 引言 | 第72页 |
| 4.2 实验材料和方法 | 第72-81页 |
| 4.2.1 主要试剂 | 第72-73页 |
| 4.2.2 主要仪器与设备 | 第73-74页 |
| 4.2.3 实验动物及饲养条件 | 第74页 |
| 4.2.4 实验设计 | 第74-75页 |
| 4.2.5 实验准备与溶液的配制 | 第75页 |
| 4.2.6 实验样本的采集 | 第75-76页 |
| 4.2.7 斑马鱼幼鱼游泳行为的测定 | 第76页 |
| 4.2.8 样本预处理 | 第76页 |
| 4.2.9 仪器分析方法 | 第76页 |
| 4.2.10 AChE、抗氧化酶和一氧化氮合酶活力的测定 | 第76-77页 |
| 4.2.11 动物组织总RNA提取 | 第77-79页 |
| 4.2.12 cDNA合成 | 第79页 |
| 4.2.13 qRT-PCR分析 | 第79-81页 |
| 4.2.14 数据处理 | 第81页 |
| 4.3 结果 | 第81-97页 |
| 4.3.1 斑马鱼胚胎的发育和生长 | 第81-85页 |
| 4.3.2 斑马鱼胚胎的游泳行为 | 第85-86页 |
| 4.3.3 水样中氟西汀的浓度 | 第86页 |
| 4.3.4 斑马鱼胚胎/幼鱼体内氟西汀的浓度 | 第86-87页 |
| 4.3.5 斑马鱼胚胎中AChE和抗氧化酶活力 | 第87-88页 |
| 4.3.6 相关性分析 | 第88-91页 |
| 4.3.7 斑马鱼胚胎中神经发育相关基因的表达 | 第91-93页 |
| 4.3.8 斑马鱼胚胎中细胞凋亡相关基因的表达 | 第93-95页 |
| 4.3.9 斑马鱼胚胎中NF-kB基因的表达 | 第95-96页 |
| 4.3.10 斑马鱼成鱼体内氟西汀的浓度 | 第96-97页 |
| 4.3.11 斑马鱼成鱼对于氟西汀的蓄积能力 | 第97页 |
| 4.4 分析与讨论 | 第97-104页 |
| 4.4.1 氟西汀暴露对斑马鱼胚胎的靶向毒性效应 | 第98-99页 |
| 4.4.2 氟西汀暴露对斑马鱼胚胎的非靶向毒性效应 | 第99页 |
| 4.4.3 斑马鱼胚胎/幼鱼氟西汀内暴露浓度和影响效应之间的关系 | 第99-100页 |
| 4.4.4 氟西汀暴露对斑马鱼胚胎神经发育相关基因表达的影响 | 第100-102页 |
| 4.4.5 氟西汀暴露对斑马鱼胚胎细胞凋亡相关基因表达的影响 | 第102-103页 |
| 4.4.6 斑马鱼成鱼对于药物的蓄积研究 | 第103-104页 |
| 4.5 小结 | 第104-105页 |
| 第五章 氟西汀的紫外光解行为以及产物对于斑马鱼胚胎的早期毒性评价 | 第105-129页 |
| 5.1 引言 | 第105-106页 |
| 5.2 实验材料和方法 | 第106-111页 |
| 5.2.1 主要试剂 | 第106页 |
| 5.2.2 主要仪器与设备 | 第106-107页 |
| 5.2.3 光反应仪器 | 第107-108页 |
| 5.2.4 实验动物及饲养条件 | 第108页 |
| 5.2.5 实验设计 | 第108-109页 |
| 5.2.6 实验准备与溶液的配制 | 第109页 |
| 5.2.7 实验样本的采集 | 第109页 |
| 5.2.8 仪器分析方法 | 第109-110页 |
| 5.2.9 AChE、抗氧化酶和一氧化氮合酶活力的测定 | 第110页 |
| 5.2.10 动物组织总RNA提取 | 第110页 |
| 5.2.11 cDNA合成 | 第110-111页 |
| 5.2.12 qRT-PCR分析 | 第111页 |
| 5.2.13 数据处理 | 第111页 |
| 5.3 结果 | 第111-124页 |
| 5.3.1 氟西汀的紫外光解研究 | 第111-112页 |
| 5.3.2 初始浓度对于氟西汀紫外光解的影响 | 第112-113页 |
| 5.3.3 超纯水和斑马鱼胚胎养殖水（E3）对于氟西汀紫外光解的影响 | 第113-114页 |
| 5.3.4 紫外光和自然光对于氟西汀降解能力的比较 | 第114-115页 |
| 5.3.5 氟西汀紫外光解后中间产物分析 | 第115页 |
| 5.3.6 氟西汀紫外光解产物对于斑马鱼胚胎的毒性研究 | 第115-124页 |
| 5.4 分析与讨论 | 第124-127页 |
| 5.4.1 氟西汀紫外光解效率和降解途径 | 第124-125页 |
| 5.4.2 氟西汀紫外光解产物斑马鱼胚胎生长发育的影响 | 第125-126页 |
| 5.4.3 氟西汀紫外光解产物对斑马鱼胚胎抗氧化能力的影响 | 第126页 |
| 5.4.4 氟西汀紫外光解产物对斑马鱼胚胎神经发育相关基因表达的影响 | 第126-127页 |
| 5.4.5 氟西汀紫外光解产物对斑马鱼胚胎细胞凋亡相关基因表达的影响 | 第127页 |
| 5.5 小结 | 第127-129页 |
| 第六章 氟西汀的电子束辐照降解以及产物对于斑马鱼胚胎的早期毒性评价 | 第129-139页 |
| 6.1 引言 | 第129页 |
| 6.2 实验材料和方法 | 第129-133页 |
| 6.2.1 主要试剂 | 第129-130页 |
| 6.2.2 主要仪器与设备 | 第130-131页 |
| 6.2.3 电子束辐照装置 | 第131页 |
| 6.2.4 实验动物及饲养条件 | 第131页 |
| 6.2.5 实验设计 | 第131-132页 |
| 6.2.6 实验准备与溶液的配制 | 第132页 |
| 6.2.7 实验样本的采集 | 第132页 |
| 6.2.8 仪器分析方法 | 第132页 |
| 6.2.9 一氧化氮合酶活力的测定 | 第132-133页 |
| 6.2.10 数据处理 | 第133页 |
| 6.3 结果 | 第133-137页 |
| 6.3.1 水样中氟西汀的浓度 | 第133页 |
| 6.3.2 斑马鱼胚胎的生长和发育 | 第133-136页 |
| 6.3.3 斑马鱼胚胎中一氧化氮合酶活力 | 第136-137页 |
| 6.4 分析与讨论 | 第137-138页 |
| 6.5 小结 | 第138-139页 |
| 第七章 结论与展望 | 第139-142页 |
| 7.1 结论 | 第139-140页 |
| 7.2 本研究创新点 | 第140-141页 |
| 7.3 展望 | 第141-142页 |
| 参考文献 | 第142-164页 |
| 参加课题与科研成果 | 第164-168页 |
| 致谢 | 第168-171页 |
