| 缩写词 | 第9-10页 |
| 摘要 | 第10-12页 |
| ABSTRACT | 第12-13页 |
| 第一章 前言 | 第15-26页 |
| 1.1 植物对干旱胁迫的生理生化反应及适应性 | 第15-17页 |
| 1.1.1 植物形态的改变 | 第15页 |
| 1.1.2 组织水分代谢失调 | 第15-16页 |
| 1.1.3 细胞膜受损及膜质过氧化 | 第16页 |
| 1.1.4 抗氧化酶类活性变化 | 第16页 |
| 1.1.5 渗透调节作用增强 | 第16-17页 |
| 1.2 干旱胁迫对植物次生代谢产物积累的影响 | 第17-18页 |
| 1.3 代谢组学及其在植物非生物胁迫研究中的应用 | 第18-20页 |
| 1.3.1 代谢组学及研究方法 | 第18-19页 |
| 1.3.2 代谢组学在植物非生物胁迫中的应用 | 第19-20页 |
| 1.4 转录组学及其在植物非生物胁迫中的应用 | 第20-22页 |
| 1.4.1 转录组学及研究技术 | 第20-21页 |
| 1.4.2 转录组在植物次生代谢研究中的应用 | 第21页 |
| 1.4.3 转录组学在植物非生物胁迫研究中的应用 | 第21-22页 |
| 1.5 黄芪研究进展 | 第22-23页 |
| 1.6 选题背景和研究意义 | 第23-24页 |
| 1.7 研究内容及技术路线 | 第24-26页 |
| 1.7.1 研究内容 | 第24-25页 |
| 1.7.2 技术路线 | 第25-26页 |
| 第二章 干旱胁迫对黄芪生理生化指标及次生代谢产物积累的影响 | 第26-52页 |
| 2.1 实验材料 | 第26-27页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第26页 |
| 2.1.2 试剂与药品 | 第26-27页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-31页 |
| 2.2.1 实验设计 | 第27-28页 |
| 2.2.2 测定指标和方法 | 第28-30页 |
| 2.2.3 数据处理 | 第30-31页 |
| 2.3 结果与分析 | 第31-50页 |
| 2.3.1 干旱胁迫对土壤相对含水量的影响 | 第31页 |
| 2.3.2 干旱胁迫对叶片相对含水量的影响 | 第31-33页 |
| 2.3.3 干旱胁迫对根组织相对含水量的影响 | 第33页 |
| 2.3.4 干旱胁迫对叶片电解质渗透率的影响 | 第33-34页 |
| 2.3.5 干旱胁迫对丙二醛含量的影响 | 第34-35页 |
| 2.3.6 干旱胁迫对游离脯氨酸含量的影响 | 第35-36页 |
| 2.3.7 干旱胁迫对可溶性糖含量的影响 | 第36-37页 |
| 2.3.8 干旱胁迫对抗氧化酶类活性的影响 | 第37-41页 |
| 2.3.9 干旱胁迫对黄芪生物量的影响 | 第41-42页 |
| 2.3.10 干旱胁迫对黄酮类成分积累影响 | 第42-45页 |
| 2.3.11 干旱胁迫对黄芪甲苷积累影响 | 第45-46页 |
| 2.3.12 相关性分析 | 第46-50页 |
| 2.4 讨论 | 第50-51页 |
| 2.5 小结 | 第51-52页 |
| 第三章 基于NMR的代谢组学研究黄芪对干旱胁迫的响应 | 第52-65页 |
| 3.1 实验材料 | 第52-53页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第52-53页 |
| 3.1.2 试剂与药品 | 第53页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第53页 |
| 3.2 实验方法 | 第53-54页 |
| 3.2.1 样本制备步骤 | 第53-54页 |
| 3.2.2 数据处理过程 | 第54页 |
| 3.3 结果与分析 | 第54-63页 |
| 3.3.1 代谢物归属分析 | 第54-55页 |
| 3.3.2 差异代谢物分析 | 第55-60页 |
| 3.3.3 多元统计学分析 | 第60-63页 |
| 3.4 讨论 | 第63-64页 |
| 3.5 小结 | 第64-65页 |
| 第四章 应用转录组学研究黄芪对干旱胁迫的响应 | 第65-102页 |
| 4.1 实验材料 | 第65-66页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第65页 |
| 4.1.2 试剂与药品 | 第65页 |
| 4.1.3 主要仪器设备 | 第65-66页 |
| 4.2 实验方法 | 第66-71页 |
| 4.2.1 RNA的提取 | 第66-67页 |
| 4.2.2 转录组测序文库的制备 | 第67页 |
| 4.2.3 测序数据的质量评估 | 第67-68页 |
| 4.2.4 转录组de novo组装 | 第68-69页 |
| 4.2.5 Unigene功能注释及COG分类 | 第69页 |
| 4.2.6 差异表达基因分析 | 第69-70页 |
| 4.2.7 差异表达基因的GO和Pathway分析 | 第70-71页 |
| 4.3 结果与分析 | 第71-100页 |
| 4.3.1 转录组测序产量及组装结果分析 | 第71-73页 |
| 4.3.2 Unigene功能注释结果 | 第73-77页 |
| 4.3.3 差异表达基因分析及功能注释 | 第77-81页 |
| 4.3.4 干旱过程中差异表达基因功能分析 | 第81-90页 |
| 4.3.5 综合转录学和代谢组学分析黄芪对干旱胁迫的响应 | 第90-95页 |
| 4.3.6 干旱胁迫下黄酮类相关基因表达 | 第95-100页 |
| 4.4 讨论 | 第100-101页 |
| 4.5 小结 | 第101-102页 |
| 第五章 适度干旱胁迫对黄芪产量和品质的影响 | 第102-111页 |
| 5.1 实验材料 | 第102-103页 |
| 5.1.1 植物材料 | 第102页 |
| 5.1.2 试剂与药品 | 第102页 |
| 5.1.3 主要仪器设备 | 第102-103页 |
| 5.2 实验方法 | 第103-105页 |
| 5.2.1 实验设计 | 第103页 |
| 5.2.2 UPLC测黄芪甲苷含量 | 第103-104页 |
| 5.2.3 UPLC测4种黄酮类成分含量 | 第104-105页 |
| 5.2.4 数据处理 | 第105页 |
| 5.3 结果与分析 | 第105-109页 |
| 5.3.1 适度干旱胁迫对黄芪生物量的影响 | 第105-106页 |
| 5.3.2 适度干旱胁迫对黄酮类成分积累的影响 | 第106-109页 |
| 5.3.3 适度干旱胁迫对黄芪甲苷积累的影响 | 第109页 |
| 5.4 讨论 | 第109-110页 |
| 5.5 小结 | 第110-111页 |
| 第六章 叶面喷施外源性水杨酸对黄芪抗旱性的影响 | 第111-125页 |
| 6.1 实验材料 | 第111-112页 |
| 6.1.1 植物材料 | 第111页 |
| 6.1.2 试剂与药品 | 第111-112页 |
| 6.1.3 主要仪器设备 | 第112页 |
| 6.2 实验方法 | 第112-113页 |
| 6.2.1 实验设计 | 第112页 |
| 6.2.2 测定指标和方法 | 第112-113页 |
| 6.3 结果与分析 | 第113-122页 |
| 6.3.1 外源水杨酸对干旱胁迫下土壤相对含水量的影响 | 第113-114页 |
| 6.3.2 外源水杨酸对干旱胁迫下叶片水势和叶片相对含水量的影响 | 第114页 |
| 6.3.3 外源水杨酸对干旱胁迫下叶片叶绿素含量的影响 | 第114-115页 |
| 6.3.4 外源水杨酸对干旱胁迫下叶片电解质渗透率的影响 | 第115-116页 |
| 6.3.5 外源水杨酸对干旱胁迫下丙二醛含量的影响 | 第116-117页 |
| 6.3.6 外源水杨酸对干旱胁迫下抗氧化酶类活性的影响 | 第117-120页 |
| 6.3.7 外源水杨酸对干旱胁迫下脯氨酸含量的影响 | 第120-121页 |
| 6.3.8 外源水杨酸对干旱胁迫下可溶性糖含量的影响 | 第121-122页 |
| 6.3.9 外源水杨酸对干旱胁迫下生物量的影响 | 第122页 |
| 6.4 讨论 | 第122-123页 |
| 6.5 小结 | 第123-125页 |
| 第七章 结论与创新性 | 第125-127页 |
| 7.1 结论 | 第125-126页 |
| 7.2 创新性 | 第126-127页 |
| 参考文献 | 第127-139页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第139-140页 |
| 致谢 | 第140页 |
