| 摘要 | 第3-10页 |
| ABSTRACT | 第10-14页 |
| 前言 | 第18-25页 |
| 参考文献 | 第21-25页 |
| 第一部分 CXXC锌指蛋白5在卵巢癌中的表达情况及其临床意义 | 第25-51页 |
| 前言 | 第25-26页 |
| 材料与方法 | 第26-32页 |
| 材料 | 第26-29页 |
| 1.1 临床病理标本及病人资料 | 第26页 |
| 1.2 试剂 | 第26-28页 |
| 1.3 仪器设备 | 第28-29页 |
| 方法 | 第29-32页 |
| 2.1 生物信息学分析 | 第29页 |
| 2.2 卵巢癌组织芯片免疫组化染色 | 第29-31页 |
| 2.3 统计学分析 | 第31-32页 |
| 结果 | 第32-44页 |
| 3.1 CXXC5在GEO数据库提供的卵巢癌数据中高表达,与卵巢癌进展密切相关 | 第32-36页 |
| 3.2 CXXC5在TCGA数据库提供的高级别浆液性卵巢腺癌中以扩增为主 | 第36页 |
| 3.5 卵巢癌患者的临床病理资料分析 | 第36-38页 |
| 3.4 CXXC5在卵巢癌组织及对照组织中的表达 | 第38-39页 |
| 3.5 CXXC5与卵巢癌组织学类型及淋巴结转移密切相关 | 第39-44页 |
| 讨论 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-51页 |
| 第二部分 探讨CXXC5基因在卵巢癌中的生物学功能 | 第51-98页 |
| 前言 | 第51-52页 |
| 材料与方法 | 第52-77页 |
| 材料 | 第52-56页 |
| 1.1 细胞系 | 第52页 |
| 1.2 试剂 | 第52-53页 |
| 1.3 常用试剂配制 | 第53-56页 |
| 方法 | 第56-77页 |
| 2.1 细胞的培养 | 第56页 |
| 2.2 细胞复苏 | 第56页 |
| 2.3 细胞传代培养 | 第56-57页 |
| 2.4 细胞的冻存 | 第57页 |
| 2.5 细胞计数方法 | 第57页 |
| 2.6 细胞中CXXC5的mRNA表达量(RT-PCR检测) | 第57-60页 |
| 2.7 细胞中CXXC5的蛋白表达量(Western blot检测) | 第60-63页 |
| 2.8 CXXC5过表达,干扰慢病毒载体构建稳定转染细胞株 | 第63-72页 |
| 2.9 卵巢癌细胞增殖实验-CCK-8实验 | 第72-73页 |
| 2.10 卵巢癌细胞空穿实验(transwell migration) | 第73页 |
| 2.11 卵巢癌细胞胶穿实验(transwell invasion assay) | 第73-74页 |
| 2.12 卵巢癌细胞的周期实验(cell cycle) | 第74-75页 |
| 2.13 卵巢癌细胞的凋亡实验(cell apoptosis) | 第75页 |
| 2.14 卵巢癌细胞的平板克隆形成实验(clone formation) | 第75页 |
| 2.15 裸鼠移植瘤模型的建立 | 第75-77页 |
| 结果 | 第77-93页 |
| 3.1 CXXC5在5种不同的卵巢癌中的表达水平检测 | 第77-78页 |
| 3.2 慢病毒介导的CXXC5基因的过表达和干扰效率验证 | 第78-79页 |
| 3.3 CXXC5促进卵巢癌体外增殖的能力 | 第79-81页 |
| 3.4 CXXC5对裸鼠皮下移植瘤增殖能力的影响 | 第81-86页 |
| 3.5 CXXC5对卵巢癌体外凋亡能力的影响 | 第86-87页 |
| 3.6 CXXC5对卵巢癌体外周期能力的影响 | 第87-88页 |
| 3.7 CXXC5对卵巢癌体外迁移能力的影响 | 第88-89页 |
| 3.8 CXXC5对卵巢癌体外侵袭能力的影响 | 第89-90页 |
| 3.9 CXXC5对Src,Akt,Erk1/2信号通路的影响 | 第90-93页 |
| 讨论 | 第93-95页 |
| 参考文献 | 第95-98页 |
| 附录 | 第98-100页 |
| 攻读硕士学位期间科研成果 | 第100-102页 |
| 致谢 | 第102-104页 |
