| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 掌叶木的形态特征 | 第11-13页 |
| 1.2 掌叶木的研究进展 | 第13-19页 |
| 1.2.1 掌叶木的分类学研究 | 第13-14页 |
| 1.2.2 掌叶木的生物学研究 | 第14-16页 |
| 1.2.3 掌叶木的生态学研究 | 第16-18页 |
| 1.2.4 掌叶木的经济价值研究 | 第18页 |
| 1.2.5 掌叶木的濒危机制和保护 | 第18-19页 |
| 1.3 遗传多样性研究概述 | 第19-20页 |
| 1.4 谱系分化研究概述 | 第20-21页 |
| 1.5 本研究的目的意义 | 第21-22页 |
| 第二章 材料与方法 | 第22-35页 |
| 2.1 野外采样 | 第22-23页 |
| 2.2 主要试剂和仪器 | 第23-25页 |
| 2.2.1 主要试剂及其配制 | 第23-24页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第24页 |
| 2.2.3 常用溶液的配制 | 第24-25页 |
| 2.3 掌叶木基因组DNA的提取与检测 | 第25-28页 |
| 2.3.1 掌叶木叶片DNA的提取方法 | 第25-27页 |
| 2.3.2 模板DNA的浓度和纯度检测方法 | 第27-28页 |
| 2.4 掌叶木SSR-PCR实验方法 | 第28-29页 |
| 2.4.1 SSR的PCR引物序列 | 第28-29页 |
| 2.4.2 SSR-PCR扩增 | 第29页 |
| 2.4.3 扩增产物进行毛细管电泳实验 | 第29页 |
| 2.5 掌叶木CPDNA和ITS-PCR实验方法 | 第29-31页 |
| 2.5.1 cpDNA和ITS的PCR引物序列 | 第29-31页 |
| 2.5.2 cpDNA和ITS的PCR扩增 | 第31页 |
| 2.5.3 扩增产物电泳检测及测序 | 第31页 |
| 2.6 数据分析 | 第31-35页 |
| 2.6.1 掌叶木的遗传多样性数据分析 | 第31-34页 |
| 2.6.2 掌叶木的谱系分化数据分析 | 第34-35页 |
| 第三章 结果与分析 | 第35-55页 |
| 3.1 提取的总DNA质量检测 | 第35页 |
| 3.2 掌叶木引物筛选及扩增 | 第35-43页 |
| 3.2.1 SSR引物筛选 | 第35-36页 |
| 3.2.2 SSR毛细管电泳实验 | 第36-41页 |
| 3.2.3 cpDNA和ITS引物的设计及筛选 | 第41-42页 |
| 3.2.4 cpDNA和ITS测序实验 | 第42-43页 |
| 3.3 掌叶木SSR遗传多样性分析 | 第43-50页 |
| 3.3.1 居群遗传多样性参数 | 第43-44页 |
| 3.3.2 居群Hardy-Weinberg平衡检测（P值检测） | 第44-45页 |
| 3.3.3 居群遗传分化程度 | 第45-46页 |
| 3.3.4 分子变异层次分析（AMOVA） | 第46-47页 |
| 3.3.5 相关性检验 | 第47页 |
| 3.3.6 居群遗传结构与聚类分析 | 第47-50页 |
| 3.4 掌叶木谱系分化分析 | 第50-55页 |
| 3.4.1 掌叶木叶绿体基因碱基组成 | 第50页 |
| 3.4.2 掌叶木核糖体基因碱基组成 | 第50页 |
| 3.4.3 掌叶木叶绿体基因和核糖体基因碱基组成 | 第50-51页 |
| 3.4.4 掌叶木群体历史分析 | 第51页 |
| 3.4.5 掌叶木群体的遗传距离与聚类分析 | 第51-55页 |
| 第四章 讨论 | 第55-60页 |
| 4.1 掌叶木的遗传多样性 | 第55-56页 |
| 4.2 掌叶木的居群遗传结构 | 第56-57页 |
| 4.3 掌叶木的谱系分化研究 | 第57-58页 |
| 4.4 濒危原因 | 第58-59页 |
| 4.5 保护建议 | 第59-60页 |
| 第五章 结论 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-74页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75页 |