| 摘要 | 第11-14页 |
| ABSTRACT | 第14-17页 |
| 第一章 绪论 | 第18-48页 |
| 1.1 基因治疗 | 第18页 |
| 1.2 基因载体 | 第18-19页 |
| 1.3 病毒载体 | 第19-20页 |
| 1.4 非病毒载体 | 第20-32页 |
| 1.4.1 阳离子脂质体 | 第20-21页 |
| 1.4.2 阳离子表面活性剂聚集体 | 第21-23页 |
| 1.4.3 两性表面活性剂聚集体 | 第23-25页 |
| 1.4.4 多胺 | 第25页 |
| 1.4.5 多价金属离子 | 第25-26页 |
| 1.4.6 纳米材料 | 第26-29页 |
| 1.4.6.1 金纳米粒子 | 第26-27页 |
| 1.4.6.2 磁性纳米粒子 | 第27-28页 |
| 1.4.6.3 碳纳米管 | 第28页 |
| 1.4.6.4 二氧化硅纳米粒子 | 第28-29页 |
| 1.4.7 高聚物 | 第29-32页 |
| 1.4.7.1 聚乙烯亚胺(PEI) | 第30页 |
| 1.4.7.2 聚乙二醇(PEG) | 第30页 |
| 1.4.7.3 壳聚糖 | 第30-32页 |
| 1.5 非病毒基因载体在基因传递中面临的障碍 | 第32-33页 |
| 1.5.1 细胞封装 | 第32页 |
| 1.5.2 细胞对DNA-载体复合物的摄取 | 第32-33页 |
| 1.5.3 DNA的释放与进核 | 第33页 |
| 1.6 DNA与非病毒基因载体相互作用的研究手段及方法 | 第33-37页 |
| 1.6.1 透射电镜(TEM) | 第34页 |
| 1.6.2 荧光显微镜(FM) | 第34页 |
| 1.6.3 原子力显微镜(AFM) | 第34-35页 |
| 1.6.4 圆二色光谱(CD) | 第35页 |
| 1.6.5 相图法 | 第35-36页 |
| 1.6.6 浊度法 | 第36-37页 |
| 1.7 论文的研究内容和意义 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-48页 |
| 第二章 不同链长的两性表面活性剂(C_nDMAO)聚集体对DNA的捕捉与释放 | 第48-83页 |
| 2.1 引言 | 第48-50页 |
| 2.2 实验部分 | 第50-54页 |
| 2.2.1 实验药品 | 第50-52页 |
| 2.2.2 样品配制 | 第52页 |
| 2.2.3 样品溶液pH测试 | 第52页 |
| 2.2.4 样品溶液浊度和紫外吸收光谱测试 | 第52页 |
| 2.2.5 Zeta电位测试 | 第52页 |
| 2.2.6 圆二色光谱(CD)测试 | 第52-53页 |
| 2.2.7 高效液相色谱-质谱联用(HPLC-MS)测试 | 第53页 |
| 2.2.8 琼脂糖凝胶电泳(AGE)测试 | 第53页 |
| 2.2.9 动态激光光散射(DLS)测试 | 第53页 |
| 2.2.10 原子力显微镜(AFM)表征 | 第53页 |
| 2.2.11 激光共聚焦荧光显微镜(FM)表征 | 第53页 |
| 2.2.12 临界胶束浓度(cmc)测定 | 第53-54页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第54-75页 |
| 2.3.1 DNA在冰醋酸水溶液中稳定性的研究 | 第54-55页 |
| 2.3.2 相行为观察 | 第55-57页 |
| 2.3.3 C_nDMAO/DNA溶液的光谱学研究 | 第57-66页 |
| 2.3.4 C_nDMAO/DNA溶液的琼脂糖凝胶电泳(AGE) | 第66-67页 |
| 2.3.5 DNA分子构象变化 | 第67-69页 |
| 2.3.6 机理讨论 | 第69-72页 |
| 2.3.7 C_nDMAOH~+/DNA复合物在β-CD和SDS诱导下的解压缩研究 | 第72-75页 |
| 2.4 本章小结 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-83页 |
| 第三章 热响应的两性表面活性剂(C_nDMAO)聚集体调控DNA的捕捉与释放 | 第83-110页 |
| 3.1 引言 | 第83-84页 |
| 3.2 实验部分 | 第84-87页 |
| 3.2.1 实验药品 | 第84页 |
| 3.2.2 样品配制 | 第84-85页 |
| 3.2.3 样品溶液相行为观察 | 第85页 |
| 3.2.4 临界胶束浓度(cmc)测试 | 第85页 |
| 3.2.5 样品溶液pH测试 | 第85页 |
| 3.2.6 DNA分子解链温度(T_m)测试 | 第85页 |
| 3.2.7 Zeta电位测试 | 第85-86页 |
| 3.2.8 傅里叶变换红外光谱(FT-IR)测试 | 第86页 |
| 3.2.9 紫外吸收光谱和浊度测试 | 第86页 |
| 3.2.10 圆二色光谱(CD)测试 | 第86页 |
| 3.2.11 荧光光谱测试 | 第86页 |
| 3.2.12 原子力显微镜(AFM)表征 | 第86页 |
| 3.2.13 动态激光光散射(DLS)测试 | 第86-87页 |
| 3.2.14 琼脂糖凝胶电泳(AGE)测试 | 第87页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第87-103页 |
| 3.3.1 DNA在Tris-HCl缓冲溶液中稳定性的研究 | 第87页 |
| 3.3.2 C_nDMAO分子在Tris-HCl缓冲溶液中质子化过程的研究 | 第87-89页 |
| 3.3.3 相行为观察 | 第89-91页 |
| 3.3.4 温度的变化对C_nDMAO/DNA溶液浊度的影响 | 第91页 |
| 3.3.5 紫外吸收光谱和圆二色光谱随温度的变化 | 第91-93页 |
| 3.3.6 不同温度下平均水动力学半径(R_h)的变化 | 第93-95页 |
| 3.3.7 DNA分子构象变化 | 第95-96页 |
| 3.3.8 不同温度下C_nDMAO/DNA溶液的荧光光谱 | 第96-99页 |
| 3.3.9 不同温度下C_nDMAO/DNA溶液的琼脂糖凝胶电泳(AGE) | 第99-100页 |
| 3.3.10 温度控制可逆捕捉释放DNA分子的研究 | 第100-102页 |
| 3.3.11 机理讨论 | 第102-103页 |
| 3.4 本章小结 | 第103页 |
| 参考文献 | 第103-110页 |
| 第四章 LA/C_(14)DMAO/H_2O体系多结构自组装体及其模板金纳米材料制备与性能 | 第110-130页 |
| 4.1 引言 | 第110-111页 |
| 4.2 实验部分 | 第111-113页 |
| 4.2.1 实验药品 | 第111页 |
| 4.2.2 样品制备 | 第111页 |
| 4.2.3 电导率和pH测定 | 第111-112页 |
| 4.2.4 流变学测定 | 第112页 |
| 4.2.5 冷冻蚀刻透射电镜观察(FF-TEM) | 第112页 |
| 4.2.6 偏光显微镜观察 | 第112页 |
| 4.2.7 差示扫描量热(DSC) | 第112页 |
| 4.2.8 氘谱核磁测定(~2H NMR) | 第112页 |
| 4.2.9 金纳米材料的表征 | 第112页 |
| 4.2.10 金纳米材料与DNA分子相互作用的测定 | 第112-113页 |
| 4.2.11 细胞毒性实验(MTT法) | 第113页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第113-125页 |
| 4.3.1 LA/C_(14)DMAO/H_2O三元体系相行为 | 第113-116页 |
| 4.3.2 典型样品聚集体形貌表征 | 第116-117页 |
| 4.3.3 流变学性质 | 第117-119页 |
| 4.3.4 凝胶化转变温度(T_g)的影响因素 | 第119-120页 |
| 4.3.5 氘代核磁共振研究(~2H NMR) | 第120-121页 |
| 4.3.6 模板法制备金纳米材料 | 第121-123页 |
| 4.3.7 金纳米材料与DNA分子相互作用的探究 | 第123-125页 |
| 4.4 本章小结 | 第125页 |
| 参考文献 | 第125-130页 |
| 论文的创新点和不足之处 | 第130-131页 |
| 致谢 | 第131-132页 |
| 攻读博士学位期间发表论文 | 第132-134页 |
| 附件 | 第134-154页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第154页 |
