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过氧化物酶体增殖物激活受体-α(PPARα)激活对内质网应激介导的HepG2细胞凋亡的作用研究

中文摘要第1-13页
Abstract第13-17页
1 前言第17-18页
2 实验材料第18-22页
   ·细胞株第18页
   ·抗体第18-19页
   ·主要试剂来源及配制第19-20页
   ·引物设计和合成第20-21页
   ·实验仪器第21-22页
3 实验方法第22-34页
   ·实验分组第22-23页
   ·细胞培养第23-24页
   ·MTT 法检测细胞活力第24页
   ·DAPI-PI 双染法检测细胞活力第24-25页
   ·HepG2 细胞培养上清液 ALT 测定(赖氏法)第25-26页
   ·HepG2 细胞培养上清液 AST 测定(赖氏法)第26-27页
   ·HepG2 细胞内 MDA 含量测定(TBA 法)第27-28页
   ·流式细胞术第28-29页
     ·Annexin V-FITC/PI 双染检测细胞调亡原理第28-29页
     ·操作流程第29页
   ·RT-PCR第29-31页
     ·RNA 提取第29-30页
     ·RT 反应第30-31页
     ·PCR 扩增第31页
     ·凝胶电泳和定量分析第31页
   ·蛋白质印迹(Westernblotting,WB)第31-33页
     ·蛋白样品制备第31-32页
     ·SDS-PAGE 凝胶制备第32页
     ·上样电泳第32页
     ·转膜第32-33页
     ·WB 检测第33页
   ·细胞免疫荧光染色第33页
   ·统计学处理第33-34页
4 结果第34-45页
   ·WY14643 对 HepG2 细胞活力的影响第34-36页
     ·MTT 法第34-35页
     ·DAPI-PI 双染法第35-36页
   ·PPARα对 HepG2 细胞肝功能的影响第36-38页
   ·PPARα对 HepG2 细胞 MDA 水平的影响第38-39页
   ·PPARα对 HepG2 细胞凋亡率的影响(流式细胞术)第39-40页
   ·PPARα对 HepG2 细胞内质网应激相关分子 BiP 和 CHOP mRNA表达的影响第40-42页
   ·PPARα对 HepG2 细胞 PPARα及内质网应激相关分子 BiP 和CHOP 蛋白质表达的影响第42-44页
   ·PPARα对 HepG2 细胞内 CHOP 定位的影响第44-45页
5 讨论第45-46页
6 结论第46-47页
7 本研究的创新点第47页
8 展望第47页
9 参考文献第47-52页
附录第52-53页
致谢第53-54页
综述第54-63页
 参考文献第62-63页

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