中文摘要 | 第1-13页 |
Abstract | 第13-17页 |
1 前言 | 第17-18页 |
2 实验材料 | 第18-22页 |
·细胞株 | 第18页 |
·抗体 | 第18-19页 |
·主要试剂来源及配制 | 第19-20页 |
·引物设计和合成 | 第20-21页 |
·实验仪器 | 第21-22页 |
3 实验方法 | 第22-34页 |
·实验分组 | 第22-23页 |
·细胞培养 | 第23-24页 |
·MTT 法检测细胞活力 | 第24页 |
·DAPI-PI 双染法检测细胞活力 | 第24-25页 |
·HepG2 细胞培养上清液 ALT 测定(赖氏法) | 第25-26页 |
·HepG2 细胞培养上清液 AST 测定(赖氏法) | 第26-27页 |
·HepG2 细胞内 MDA 含量测定(TBA 法) | 第27-28页 |
·流式细胞术 | 第28-29页 |
·Annexin V-FITC/PI 双染检测细胞调亡原理 | 第28-29页 |
·操作流程 | 第29页 |
·RT-PCR | 第29-31页 |
·RNA 提取 | 第29-30页 |
·RT 反应 | 第30-31页 |
·PCR 扩增 | 第31页 |
·凝胶电泳和定量分析 | 第31页 |
·蛋白质印迹(Westernblotting,WB) | 第31-33页 |
·蛋白样品制备 | 第31-32页 |
·SDS-PAGE 凝胶制备 | 第32页 |
·上样电泳 | 第32页 |
·转膜 | 第32-33页 |
·WB 检测 | 第33页 |
·细胞免疫荧光染色 | 第33页 |
·统计学处理 | 第33-34页 |
4 结果 | 第34-45页 |
·WY14643 对 HepG2 细胞活力的影响 | 第34-36页 |
·MTT 法 | 第34-35页 |
·DAPI-PI 双染法 | 第35-36页 |
·PPARα对 HepG2 细胞肝功能的影响 | 第36-38页 |
·PPARα对 HepG2 细胞 MDA 水平的影响 | 第38-39页 |
·PPARα对 HepG2 细胞凋亡率的影响(流式细胞术) | 第39-40页 |
·PPARα对 HepG2 细胞内质网应激相关分子 BiP 和 CHOP mRNA表达的影响 | 第40-42页 |
·PPARα对 HepG2 细胞 PPARα及内质网应激相关分子 BiP 和CHOP 蛋白质表达的影响 | 第42-44页 |
·PPARα对 HepG2 细胞内 CHOP 定位的影响 | 第44-45页 |
5 讨论 | 第45-46页 |
6 结论 | 第46-47页 |
7 本研究的创新点 | 第47页 |
8 展望 | 第47页 |
9 参考文献 | 第47-52页 |
附录 | 第52-53页 |
致谢 | 第53-54页 |
综述 | 第54-63页 |
参考文献 | 第62-63页 |