| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 目录 | 第9-14页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 第一部分 苯巴比妥对新生大鼠缺氧缺血性脑损伤的保护作用 | 第16-27页 |
| 1 实验材料 | 第16-17页 |
| ·实验动物 | 第16页 |
| ·药品 | 第16页 |
| ·试剂 | 第16页 |
| ·仪器及耗材 | 第16-17页 |
| ·主要试剂配制 | 第17页 |
| 2 实验方法 | 第17-19页 |
| ·新生大鼠HIBD模型制作 | 第17-18页 |
| ·动物分组及给药 | 第18页 |
| ·观察缺氧缺血对新生大鼠行为学的影响 | 第18页 |
| ·TTC染色检测脑组织梗死面积 | 第18页 |
| ·自主活动的测定 | 第18页 |
| ·学习记忆功能的测评-Morris水迷宫实验 | 第18-19页 |
| ·统计学处理 | 第19页 |
| 3 结果 | 第19-24页 |
| ·缺氧缺血对新生大鼠行为学影响的观察结果 | 第19-20页 |
| ·TTC染色检测脑组织梗死体积比率结果 | 第20-21页 |
| ·自主活动的测定结果 | 第21-22页 |
| ·Morris水迷宫实验测试结果 | 第22-24页 |
| ·定位航行实验结果 | 第22-23页 |
| ·空间探索实验结果 | 第23-24页 |
| 4 讨论 | 第24-26页 |
| 5 小结 | 第26-27页 |
| 第二部分 苯巴比妥对HIBD新生大鼠脑组织中KCC2蛋白表达的影响 | 第27-46页 |
| 1 实验材料 | 第27-31页 |
| ·实验动物 | 第27页 |
| ·药品 | 第27页 |
| ·试剂 | 第27-28页 |
| ·仪器及设备 | 第28-29页 |
| ·常用液体试剂的配制 | 第29-31页 |
| 2 实验方法 | 第31-38页 |
| ·新生大鼠HIBD模型制作 | 第31页 |
| ·组织样本的制备 | 第31-32页 |
| ·Real-time PCR检测KCC2 mRNA的表达 | 第32-35页 |
| ·引物的设计与合成 | 第32页 |
| ·试剂与器皿的处理 | 第32页 |
| ·脑组织总RNA的提取 | 第32-33页 |
| ·RNA样品质量检测 | 第33页 |
| ·cDNA合成 | 第33-34页 |
| ·实时荧光定量PCR反应 | 第34-35页 |
| ·蛋白免疫印迹法检测KCC2蛋白的表达 | 第35-37页 |
| ·细胞总蛋白的提取及浓度测定 | 第35页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第35-36页 |
| ·免疫印迹反应 | 第36-37页 |
| ·图像分析 | 第37页 |
| ·免疫组织化学实验 | 第37-38页 |
| ·实验方法 | 第37-38页 |
| ·结果观察与图像分析 | 第38页 |
| ·统计学处理 | 第38页 |
| 3 结果 | 第38-42页 |
| ·Real-time PCR检测KCC2 mRNA表达的结果 | 第38-40页 |
| ·细胞总RNA的提取 | 第38-39页 |
| ·PCR产物的特异性 | 第39页 |
| ·目的基因KCC2、内参GAPDH扩增后的产物检测 | 第39-40页 |
| ·Western blotting检测KCC2蛋白的表达结果 | 第40-41页 |
| ·免疫组织化学 | 第41-42页 |
| 4 讨论 | 第42-45页 |
| 5 小结 | 第45-46页 |
| 结论 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 综述 探讨新生儿缺氧缺血性脑病的发病机制与治疗 | 第52-66页 |
| 参考文献 | 第62-66页 |
| 个人简历 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
