| 摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-20页 |
| 第一章 绪论 | 第20-45页 |
| ·多糖的研究概况 | 第21-37页 |
| ·多糖的提取、分离和纯化 | 第21-22页 |
| ·多糖结构表征方法 | 第22-29页 |
| ·多糖生物活性的研究 | 第29-31页 |
| ·多糖的构效关系 | 第31-32页 |
| ·多糖的免疫调节机制和抗肿瘤机制研究 | 第32-37页 |
| ·五味子多糖的研究概况 | 第37-42页 |
| ·五味子多糖的提取分离纯化 | 第38-39页 |
| ·五味子多糖的结构研究 | 第39-40页 |
| ·五味子多糖的生物活性研究 | 第40-42页 |
| ·本课题研究的目的和意义 | 第42-43页 |
| ·研究的思路和主要内容 | 第43-45页 |
| 第二章 五味子多糖SCPP11的结构研究 | 第45-70页 |
| ·仪器、材料与试剂 | 第45-46页 |
| ·仪器 | 第45-46页 |
| ·材料与试剂 | 第46页 |
| ·实验方法 | 第46-49页 |
| ·甲基化反应 | 第46-47页 |
| ·NMR测定 | 第47-48页 |
| ·圆二色谱分析 | 第48页 |
| ·粒度分布测定 | 第48页 |
| ·多角度激光光散射 | 第48页 |
| ·原子力显微镜分析 | 第48-49页 |
| ·透射电镜分析 | 第49页 |
| ·扫描电镜分析 | 第49页 |
| ·结果与讨论 | 第49-68页 |
| ·甲基化和GC-MS分析 | 第49-54页 |
| ·NMR分析 | 第54-59页 |
| ·圆二色谱分析 | 第59-63页 |
| ·粒度分布测定 | 第63页 |
| ·多角度激光光散射 | 第63-65页 |
| ·原子力显微镜分析 | 第65-67页 |
| ·透射电镜分析 | 第67-68页 |
| ·扫描电镜分析 | 第68页 |
| ·本章小节 | 第68-70页 |
| 第三章 五味子多糖SCPP11的免疫调节作用 | 第70-80页 |
| ·仪器、材料与试剂 | 第70-72页 |
| ·仪器 | 第70-71页 |
| ·材料与试剂 | 第71-72页 |
| ·实验方法 | 第72-73页 |
| ·实验分组与给药 | 第72页 |
| ·相关考察指标 | 第72-73页 |
| ·统计学处理 | 第73页 |
| ·结果与讨论 | 第73-79页 |
| ·SCPP11对小鼠体重的影响 | 第73-74页 |
| ·SCPP11对小鼠胸腺指数和脾脏指数的影响 | 第74页 |
| ·SCPP11对小鼠吞噬细胞吞噬功能的影响 | 第74-75页 |
| ·SCPP11对小鼠血清溶血水平的影响 | 第75-76页 |
| ·SCPP11对小鼠血清中免疫球蛋白的影响 | 第76-77页 |
| ·SCPP11对小鼠血清中TNF-α和IL-2水平的影响 | 第77-79页 |
| ·本章小节 | 第79-80页 |
| 第四章 五味子多糖SCPP11的抗肿瘤活性研究 | 第80-95页 |
| ·仪器、材料与试剂 | 第80-83页 |
| ·仪器 | 第80-81页 |
| ·材料与试剂 | 第81-83页 |
| ·实验方法 | 第83-85页 |
| ·荷瘤小鼠瘤株的保种、传代及移植瘤模型建立 | 第83页 |
| ·实验分组与给药 | 第83-84页 |
| ·相关考察指标 | 第84-85页 |
| ·统计学处理 | 第85页 |
| ·实验结果 | 第85-94页 |
| ·对Heps荷瘤小鼠肿瘤生长的影响 | 第85-87页 |
| ·对Heps荷瘤小鼠体重的影响 | 第87页 |
| ·对Heps荷瘤小鼠脏器指数的影响 | 第87-89页 |
| ·对Heps荷瘤小鼠血清中TNF-α和IL-2水平的影响 | 第89-90页 |
| ·对Heps荷瘤小鼠血液常规和血生化指标的影响 | 第90-92页 |
| ·对Heps荷瘤小鼠脂质过氧化的影响 | 第92-94页 |
| ·本章小结 | 第94-95页 |
| 第五章 五味子多糖SCPP11对腹腔巨噬细胞的免疫调节及机制研究 | 第95-113页 |
| ·仪器、材料与试剂 | 第95-97页 |
| ·仪器 | 第95-96页 |
| ·材料与试剂 | 第96-97页 |
| ·实验方法 | 第97-102页 |
| ·细胞的培养 | 第97-98页 |
| ·SCPP11激活后的腹腔巨噬细胞(RAW264.7(MΦ))对HepG-2细胞的影响 | 第98-99页 |
| ·SCPP11对RAW264.7细胞激活作用的研究 | 第99-100页 |
| ·SCPP11对RAW264.7细胞释放细胞因子的影响 | 第100页 |
| ·Western Blot法检测iNOS表达的水平 | 第100-101页 |
| ·SCPP11对细胞因子以及iNOS的mRNA表达的影响 | 第101-102页 |
| ·模式识别受体抗体对SCPP11诱导RAW264.7细胞产生NO和分泌TNF-α的影响 | 第102页 |
| ·统计分析 | 第102页 |
| ·结果与讨论 | 第102-111页 |
| ·P-MΦ-CM对HepG-2细胞增殖的影响 | 第102-103页 |
| ·经SCPP11诱导的RAW264.7细胞对HepG-2细胞杀伤活性的检测 | 第103-104页 |
| ·SCPP11对RAW264.7细胞外部形态变化的影响 | 第104-105页 |
| ·SCPP11对RAW264.7细胞活性的影响 | 第105页 |
| ·SCPP11对RAW264.7细胞吞噬活性的影响 | 第105-107页 |
| ·SCPP11对RAW264.7细胞释放细胞因子的影响 | 第107-108页 |
| ·SCPP11对RAW264.7细胞内iNOS表达的影响 | 第108-109页 |
| ·SCPP11对RAW264.7细胞内细胞因子以及iNOS的mRNA表达的影响 | 第109页 |
| ·TLR4/TLR-2/CR3抗体对SCPP11诱导RAW264.7细胞产生NO和分泌TNF-α的影响 | 第109-111页 |
| ·本章小节 | 第111-113页 |
| 第六章 结论与展望 | 第113-116页 |
| ·主要结论 | 第113-114页 |
| ·创新点 | 第114页 |
| ·展望 | 第114-116页 |
| 参考文献 | 第116-129页 |
| 致谢 | 第129-130页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文目录 | 第130-131页 |
