| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 第1章 绪论 | 第10-20页 |
| ·2-苯乙醇产品概况 | 第10-12页 |
| ·产品理化性质 | 第10页 |
| ·用途 | 第10页 |
| ·2-苯乙醇产品的合成方法 | 第10-12页 |
| ·生物转化法生产 2-苯乙醇的国内外研究进展 | 第12-14页 |
| ·生物转化合成 2-苯乙醇的代谢机理 | 第12-13页 |
| ·合成 2-苯乙醇的微生物 | 第13页 |
| ·生物转化合成 2-苯乙醇的工艺进展 | 第13-14页 |
| ·2-苯乙醇生物转化过程中产物抑制作用的解除 | 第14-17页 |
| ·菌种筛选 | 第15页 |
| ·原位分离技术的应用 | 第15-17页 |
| ·2-苯乙醇生物转化过程中乙醇抑制作用的解除 | 第17-18页 |
| ·2-苯乙醇的提取 | 第18页 |
| ·本课题研究内容和意义 | 第18-20页 |
| ·研究内容 | 第18页 |
| ·研究意义 | 第18-20页 |
| 第2章 生物转化 2-苯乙醇过程中检测方法的选择与构建 | 第20-30页 |
| ·概述 | 第20页 |
| ·实验部分 | 第20-23页 |
| ·实验材料 | 第20-21页 |
| ·实验方法 | 第21-23页 |
| ·结果与讨论 | 第23-29页 |
| ·DNS 法测定葡萄糖的含量[51] | 第23页 |
| ·水合茚三酮法快速测定 L-苯丙氨酸的含量 | 第23-24页 |
| ·正庚烷萃取法快速测定 2-苯乙醇的含量 | 第24-25页 |
| ·高效液相色谱法同时测定发酵液中的 L-苯丙氨酸和 2-苯乙醇的含量 | 第25-26页 |
| ·气相色谱法同时测定发酵液中的乙醇、苯乙醛、2-苯乙醇的含量 | 第26-29页 |
| ·结论 | 第29-30页 |
| 第3章 以葡萄糖为碳源生物转化合成 2-苯乙醇的机理初探 | 第30-42页 |
| ·概述 | 第30页 |
| ·实验部分 | 第30-33页 |
| ·实验材料 | 第30-31页 |
| ·实验方法 | 第31-33页 |
| ·结果与讨论 | 第33-41页 |
| ·不同不同浓度的初始葡萄糖对生物转化的影响 | 第33-35页 |
| ·不同浓度的 L-苯丙氨酸对生物转化的影响 | 第35-36页 |
| ·不同浓度的外加 2-苯乙醇对生物转化的影响 | 第36-39页 |
| ·不同浓度的外加乙醇对生物转化的影响 | 第39-41页 |
| ·结论 | 第41-42页 |
| 第4章 利用乙醇降解优化固液两相原位分离技术 | 第42-51页 |
| ·概述 | 第42页 |
| ·实验部分 | 第42-43页 |
| ·实验材料与仪器 | 第42页 |
| ·实验方法 | 第42-43页 |
| ·结果与讨论 | 第43-50页 |
| ·不加葡萄糖单独考察不同浓度乙醇对 2-苯乙醇生物转化的影响 | 第43-44页 |
| ·树脂的筛选 | 第44-45页 |
| ·大孔吸附树脂 H816 对 2-苯乙醇的吸附特性 | 第45-46页 |
| ·采用原位分离技术间歇补加乙醇生物转化 2-苯乙醇 | 第46-47页 |
| ·采用原位分离技术间歇补加葡萄糖生物转化 2-苯乙醇 | 第47-50页 |
| ·结论 | 第50-51页 |
| 第5章 2-苯乙醇的结构鉴定 | 第51-59页 |
| ·概述 | 第51页 |
| ·实验部分 | 第51-54页 |
| ·实验材料 | 第51-52页 |
| ·实验方法 | 第52-54页 |
| ·结果与讨论 | 第54-58页 |
| ·精馏样品的 GC-MS 分析 | 第54-55页 |
| ·五种不同来源 2-苯乙醇的香气阈值分析 | 第55-56页 |
| ·五种不同来源 2-PE 的电子鼻分析 | 第56-58页 |
| ·结论 | 第58-59页 |
| 第6章 主要结论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
