| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 文献综述 | 第14-39页 |
| 1. 壳聚糖微球的研究进展 | 第14-24页 |
| 参考文献 | 第19-24页 |
| 2. 乙基纤维素在缓释制剂中应用的研究进展 | 第24-30页 |
| 参考文献 | 第27-30页 |
| 3. 京尼平的研究进展 | 第30-39页 |
| 参考文献 | 第35-39页 |
| 第一章 利福布丁的处方前研究 | 第39-54页 |
| 第一节 利福布丁含量测定方法的建立 | 第41-47页 |
| 1. 材料 | 第41页 |
| 2. 仪器 | 第41页 |
| 3. 方法 | 第41-42页 |
| ·HPLC-UV检测利福布丁最大吸收波长的选择 | 第41页 |
| ·色谱条件 | 第41-42页 |
| ·专属性 | 第42页 |
| ·标准曲线与线性范围 | 第42页 |
| ·精密度 | 第42页 |
| 4. 结果 | 第42-45页 |
| ·最大吸收波长 | 第42-43页 |
| ·专属性 | 第43-44页 |
| ·标准曲线与线性范围 | 第44-45页 |
| ·精密度 | 第45页 |
| 5. 讨论 | 第45页 |
| 参考文献 | 第45-47页 |
| 第二节 利福布丁基本理化性质研究 | 第47-54页 |
| 1. 材料 | 第47页 |
| 2. 仪器 | 第47页 |
| 3. 方法 | 第47-49页 |
| ·稳定性研究 | 第47-48页 |
| ·平衡溶解度 | 第48页 |
| ·油水分配系数 | 第48-49页 |
| 4. 结果 | 第49-51页 |
| ·平衡溶解度 | 第49页 |
| ·稳定性研究 | 第49-51页 |
| ·油水分配系数 | 第51页 |
| 5. 讨论 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-54页 |
| 第二章 利福布丁壳聚糖微球的研究 | 第54-85页 |
| 第一节 交联剂的细胞毒性筛选 | 第55-63页 |
| 1. 材料 | 第55页 |
| 2. 仪器 | 第55-56页 |
| 3. 方法 | 第56-57页 |
| ·细胞培养 | 第56页 |
| ·接种 | 第56页 |
| ·MTT比色法比较不同交联剂的细胞毒性 | 第56-57页 |
| 4. 结果 | 第57-59页 |
| ·细胞培养 | 第57-58页 |
| ·接种 | 第58页 |
| ·MTT试验 | 第58-59页 |
| 5. 讨论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-63页 |
| 第二节 利福布丁壳聚糖微球的制备 | 第63-73页 |
| 1. 材料 | 第63页 |
| 2. 仪器 | 第63-64页 |
| 3. 方法 | 第64-65页 |
| ·壳聚糖微球的制备 | 第64页 |
| ·微球工艺影响因素研究与优化 | 第64-65页 |
| 4. 结果 | 第65-69页 |
| ·对包封率及载药量的影响因素 | 第65-69页 |
| ·微球的处方优化结果 | 第69页 |
| 5. 讨论 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-73页 |
| 第三节 利福布丁壳聚糖微球的表征与释放行为研究 | 第73-85页 |
| 1. 材料 | 第73页 |
| 2. 仪器 | 第73页 |
| 3. 方法 | 第73-74页 |
| ·电子扫描显微镜 | 第73页 |
| ·Zeta电位测定 | 第73-74页 |
| ·粒径分布 | 第74页 |
| ·差示扫描量热分析(DSC) | 第74页 |
| ·体外释放比较 | 第74页 |
| 4. 结果 | 第74-79页 |
| ·扫描电镜 | 第74-75页 |
| ·Zeta电位测定 | 第75-76页 |
| ·粒径分布 | 第76-78页 |
| ·差示扫描量热分析(DSC) | 第78页 |
| ·体外释放 | 第78-79页 |
| 5. 讨论 | 第79-82页 |
| 参考文献 | 第82-85页 |
| 第三章 利福布丁复合微球的研究 | 第85-118页 |
| 第一节 利福布丁乙基纤维素-壳聚糖复合微球的制备 | 第86-97页 |
| 1. 材料 | 第86页 |
| 2. 仪器 | 第86页 |
| 3. 方法 | 第86-88页 |
| ·复合微球样品的准备 | 第86页 |
| ·复合微球的制备工艺 | 第86-87页 |
| ·包封率和载药量测定方法 | 第87页 |
| ·复合微球影响因素研究 | 第87-88页 |
| ·京尼平交联复合微球的制备 | 第88页 |
| 4 结果 | 第88-93页 |
| ·对包封率和载药量的影响因素 | 第88-91页 |
| ·京尼平交联后的壳聚糖微球 | 第91-92页 |
| ·复合微球的处方优化结果 | 第92-93页 |
| 5 讨论 | 第93-95页 |
| 参考文献 | 第95-97页 |
| 第二节 复合微球的体外评价 | 第97-111页 |
| 1. 材料 | 第97页 |
| 2. 仪器 | 第97页 |
| 3. 方法 | 第97-98页 |
| ·体外释放 | 第97页 |
| ·电子扫描显微镜 | 第97-98页 |
| ·粒径分布 | 第98页 |
| ·Zeta电位 | 第98页 |
| ·差示扫描量热分析 | 第98页 |
| 4. 结果 | 第98-106页 |
| ·体外释放 | 第98-101页 |
| ·电子扫描显微镜(SEM) | 第101-102页 |
| ·粒径分布 | 第102-104页 |
| ·Zeta电位 | 第104-105页 |
| ·差示扫描量热分析(DSC) | 第105-106页 |
| 5. 讨论 | 第106-109页 |
| 参考文献 | 第109-111页 |
| 第三节 复合微球的体内释药行为 | 第111-118页 |
| 1. 材料 | 第111页 |
| 2. 仪器 | 第111页 |
| 3. 方法 | 第111-113页 |
| ·肺部药物浓度HPLC检测方法学的建立 | 第111-112页 |
| ·大鼠肺部给药 | 第112页 |
| ·肺泡灌洗术 | 第112-113页 |
| 4. 结果 | 第113-115页 |
| ·HPLC体内检测方法学 | 第113-114页 |
| ·复合微球的体内释药结果 | 第114-115页 |
| 5. 讨论 | 第115-116页 |
| 参考文献 | 第116-118页 |
| 第四章 桉叶油羟丙基-β-环糊精-海藻酸钠原位凝胶复合给药系统的研究 | 第118-134页 |
| 第一节 桉叶油HPLC分析方法的建立 | 第119-122页 |
| 1. 材料 | 第119页 |
| 2. 仪器 | 第119页 |
| 3. 实验动物 | 第119页 |
| 4. 方法 | 第119-120页 |
| 5. 结果 | 第120-121页 |
| 6. 讨论 | 第121页 |
| 参考文献 | 第121-122页 |
| 第二节 桉叶油羟丙基-β-环糊精的制备与评价 | 第122-129页 |
| 1. 材料 | 第122页 |
| 2. 仪器 | 第122页 |
| 3. 方法 | 第122-124页 |
| ·包合物制备方法 | 第122页 |
| ·包封率和含油率的计算 | 第122页 |
| ·包合工艺影响因素研究 | 第122-123页 |
| ·正交试验优化处方 | 第123页 |
| ·最佳工艺条件的验证 | 第123页 |
| ·包合物的表征 | 第123页 |
| ·包合作用对桉叶油水溶解度的影响 | 第123-124页 |
| 4. 结果 | 第124-127页 |
| ·正交优化试验结果 | 第124-125页 |
| ·最佳工艺条件的验证 | 第125-126页 |
| ·包合物的表征 | 第126-127页 |
| ·包合作用对桉叶油水溶解度的影响 | 第127页 |
| 5. 讨论 | 第127-128页 |
| 参考文献 | 第128-129页 |
| 第三节 复合系统的制备与评价 | 第129-134页 |
| 1. 材料 | 第129页 |
| 2. 仪器 | 第129页 |
| 3. 方法 | 第129-130页 |
| ·桉叶油包合物-凝胶复合系统的制备 | 第129页 |
| ·复合系统的体外溶蚀 | 第129-130页 |
| ·复合系统的体内滞留性评价 | 第130页 |
| 4. 结果 | 第130-132页 |
| ·体外溶蚀 | 第130页 |
| ·体内滞留性 | 第130-132页 |
| 5. 讨论 | 第132-133页 |
| 参考文献 | 第133-134页 |
| 全文总结 | 第134-137页 |
| 工作积累 | 第134-135页 |
| 创新点 | 第135-136页 |
| 本论文的不足与下一步工作设想 | 第136-137页 |
| 作者简历 | 第137-138页 |
| 致谢 | 第138页 |