| 内容提要 | 第1-8页 |
| 英文缩写词表 | 第8-9页 |
| 第1章 前言 | 第9-20页 |
| ·TRAIL 在脑肿瘤治疗中的作用 | 第10-14页 |
| ·TRAIL 及其受体的结构及功能 | 第10-11页 |
| ·TRAIL 诱导凋亡的非线粒体信号转导路径 | 第11页 |
| ·TRAIL 诱导凋亡的线粒体信号转导路径 | 第11-12页 |
| ·TRAIL 和死亡复合体 | 第12-13页 |
| ·Bcl-2 家族和 TRAIL | 第13页 |
| ·TRAIL 与化疗药物的联合作用 | 第13-14页 |
| ·TRAIL 在脑肿瘤治疗中的意义 | 第14页 |
| ·TRAIL 在脑肿瘤干细胞中的作用 | 第14-18页 |
| ·脑肿瘤干细胞的特性 | 第15页 |
| ·脑肿瘤干细胞的发生部位 | 第15-16页 |
| ·脑肿瘤干细胞的分离 | 第16-17页 |
| ·脑肿瘤干细胞表面标记物及分化标记物 | 第17页 |
| ·脑肿瘤干细胞抵抗TRAIL 诱导凋亡的研究进展 | 第17-18页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第18-20页 |
| 第2章 GBM 单克隆细胞株对TRAIL 敏感性的检测 | 第20-35页 |
| ·材料与方法 | 第20-26页 |
| ·主要仪器 | 第20页 |
| ·实验材料及试剂 | 第20-21页 |
| ·细胞来源 | 第21页 |
| ·主要试剂配制 | 第21-22页 |
| ·实验方法 | 第22-26页 |
| ·实验结果 | 第26-32页 |
| ·GBM 单克隆细胞株的挑选 | 第26-27页 |
| ·GBM 单克隆细胞株对TRAIL 敏感性 | 第27页 |
| ·检测GBM 单克隆细胞株TRAIL 凋亡蛋白表达 | 第27-30页 |
| ·TRAIL 诱导凋亡后各细胞株 Caspases 及 DFF-45 裂解情况 | 第30-32页 |
| ·讨论 | 第32-35页 |
| 第3章 GBM 神经球的分离、鉴定、纯化及对TRAIL 的敏感性 | 第35-52页 |
| ·材料与方法 | 第35-43页 |
| ·主要仪器 | 第35页 |
| ·实验材料及试剂 | 第35-36页 |
| ·细胞来源 | 第36页 |
| ·主要试剂配制 | 第36-38页 |
| ·实验方法 | 第38-43页 |
| ·实验结果 | 第43-48页 |
| ·GBM 悬浮神经球的形成 | 第43-44页 |
| ·第1 代GBM 神经球次级克隆形成率 | 第44页 |
| ·第3 代和第7 代神经球单细胞克隆形成率的比较 | 第44-45页 |
| ·GBM 神经球干细胞表面抗原特异性标记物的检测 | 第45页 |
| ·GBM 神经球多分化潜能的检测 | 第45-46页 |
| ·GBM 神经球经TRAIL 作用的细胞死亡率 | 第46-47页 |
| ·不同代GBM 神经球中表达TRAIL 凋亡蛋白 | 第47-48页 |
| ·小鼠致瘤实验 | 第48页 |
| ·NOD/SCID 小鼠脑肿瘤原代细胞培养 | 第48页 |
| ·讨论 | 第48-52页 |
| 第4章 CD133+/- GBM 干细胞对 TRAIL 的敏感性 | 第52-64页 |
| ·材料与方法 | 第52-55页 |
| ·主要仪器 | 第52页 |
| ·实验材料及试剂 | 第52-53页 |
| ·细胞来源 | 第53页 |
| ·主要试剂配制 | 第53-54页 |
| ·实验方法 | 第54-55页 |
| ·实验结果 | 第55-60页 |
| ·GSC326、GSC189 细胞系中神经球生长情况 | 第55-57页 |
| ·检测分选阳性率 | 第57页 |
| ·分选后CD133~(+/-)亚群细胞的增殖能力 | 第57-59页 |
| ·检测CD133~(+/-)亚群细胞经TRAIL 作用的细胞死亡率 | 第59-60页 |
| ·检测CD133~(+/-)亚群细胞中表达TRAIL 蛋白情况 | 第60页 |
| ·讨论 | 第60-64页 |
| 第5章 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-76页 |
| 附图 | 第76-84页 |
| 攻读博士期间发表的学术论文 | 第84-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 中文摘要 | 第86-90页 |
| ABSTRACT | 第90-94页 |
