| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 1 前言 | 第9-16页 |
| ·肿瘤坏死因子-α(TNF-α) | 第9-11页 |
| ·肿瘤坏死因子-α简介 | 第9页 |
| ·人肿瘤坏死因子的研究简史和现状 | 第9-11页 |
| ·人肿瘤坏死因子的检测 | 第11-12页 |
| ·hTNF-α活性的体内测定法 | 第11页 |
| ·hTNF-α活性的体外测定法 | 第11-12页 |
| ·蓝藻及其混合营养培养 | 第12-15页 |
| ·蓝藻概述 | 第12-14页 |
| ·转基因蓝藻的混合营养培养 | 第14-15页 |
| ·细胞破碎方法 | 第15页 |
| ·本研究目的与意义 | 第15-16页 |
| 2 材料与方法 | 第16-27页 |
| ·实验材料 | 第16-17页 |
| ·蓝藻藻种 | 第16-17页 |
| ·培养基 | 第17页 |
| ·主要试剂及仪器设备 | 第17-18页 |
| ·主要试剂 | 第17-18页 |
| ·主要仪器设备 | 第18页 |
| ·蓝藻培养方法 | 第18-19页 |
| ·藻种纯化和保存 | 第18-19页 |
| ·藻种试管和摇瓶培养 | 第19页 |
| ·封闭式光反应器培养 | 第19页 |
| ·葡萄糖和NaNO_3处理转hTNF-α基因鱼腥藻7120 | 第19-20页 |
| ·葡萄糖对转hTNF-α基因鱼腥藻7120的影响 | 第19-20页 |
| ·NaNO_3对转hTNF-α基因鱼腥藻7120的影响 | 第20页 |
| ·不同破碎方法处理转hTNF-α基因鱼腥藻7120 | 第20-21页 |
| ·超声波破碎条件优化 | 第20-21页 |
| ·超声波破碎和反复冻融破碎法对hTNF-α蛋白活性的影响 | 第21页 |
| ·hTNF-α活性稳定性研究 | 第21-22页 |
| ·实验材料 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22页 |
| ·转hTNF-α基因鱼腥藻7120小鼠急性毒性试验 | 第22-23页 |
| ·试验材料及条件 | 第22-23页 |
| ·试验方法 | 第23页 |
| ·转hTNF-α基因鱼腥藻小鼠肝癌H-22治疗试验 | 第23-24页 |
| ·试验材料及条件 | 第23-24页 |
| ·实验方法 | 第24页 |
| ·藻细胞密度的测定 | 第24页 |
| ·叶绿素含量的测定 | 第24页 |
| ·总可溶性蛋白含量的测定 | 第24-25页 |
| ·目的蛋白hTNF-α的检测 | 第25-26页 |
| ·目的蛋白的定量测定——酶联免疫法 | 第25-26页 |
| ·细胞破碎率的测定 | 第26-27页 |
| 3 结果与讨论 | 第27-48页 |
| ·葡萄糖和NaNO_3对转hTNF-α基因鱼腥藻7120的影响 | 第27-32页 |
| ·葡萄糖对转hTNF-α基因鱼腥藻7120的影响 | 第27-29页 |
| ·NaNO_3对转hTNF-α基因鱼腥藻7120的影响 | 第29-32页 |
| ·不同破碎方法对hTNF-α蛋白活性的影响 | 第32-37页 |
| ·超声波破碎条件优化 | 第32-36页 |
| ·超声波破碎和反复冻融破碎法对hTNF-α蛋白活性的影响 | 第36-37页 |
| ·hTNF-α细胞毒活性测定及蛋白活性稳定性研究 | 第37-38页 |
| ·转hTNF-α基因鱼腥藻7120小鼠急性毒性试验 | 第38-39页 |
| ·转hTNF-α基因鱼腥藻小鼠肝癌H-22治疗试验 | 第39-46页 |
| ·讨论 | 第46-48页 |
| 4 结论 | 第48-50页 |
| 5 展望 | 第50-51页 |
| 6 参考文献 | 第51-58页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文及专利情况 | 第58-59页 |
| 8 致谢 | 第59-60页 |
| 9 附录 | 第60-61页 |
